文章信息
- 李子英, 丛日春, 杨庆山, 周健.
- LI Ziying, CONG Richun, YANG Qingshan, ZHOU Jian.
- 盐碱胁迫对柳树幼苗生长和渗透调节物质含量的影响
- Effects of saline-alkali stress on growth and osmotic adjustment substances in willow seedlings
- 生态学报. 2017, 37(24): 8511-8517
- Acta Ecologica Sinica. 2017, 37(24): 8511-8517
- http://dx.doi.org/10.5846/stxb201611082263
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文章历史
- 收稿日期: 2016-11-08
- 网络出版日期: 2017-08-15
2. 山东省林业科学研究院, 济南 250014
2. Shandong Forestry Research Institute, Ji'nan 250014, China
土壤盐碱化是限制植物生长和生产的重要因素[1-2]。种植适应盐碱地生长的植物是治理盐碱、改善盐碱地区生态环境的有效措施。以往的盐胁迫研究主要以单盐作为胁迫盐, 但就我国而言, 大面积的盐碱地中, 除新疆和松花江部分地区土壤以硝酸盐为主外, 其他地区主要是含有Na+、K+、Mg2+的3种阳离子和CO32-、HCO3-、Cl-、SO42-的4种阴离子的复合盐碱地, 所含盐分复杂, 盐化与碱化往往相伴发生[3], 生态破坏力也比单独的中性盐更大。因此, 混合盐碱胁迫是实际存在的主要问题。根据这一现状, 人们将NaCl、Na2SO4、NaHCO3、Na2CO3按不同比例混合, 人工模拟混合盐碱胁迫条件, 对燕麦[4]、绿豆[5]、红砂[6]、桑树[7]、甜瓜[8]、向日葵[9]等多种植物展开了研究。盐胁迫和碱胁迫是两种不同性质的胁迫。在混合盐碱胁迫中, 既有盐胁迫也有碱胁迫, 二者间具有协同效应。碱胁迫强度较低时盐胁迫起主导作用, 碱胁迫强度较高时碱胁迫起主导作用。其中缓冲量和盐度是复杂盐碱条件对植物胁迫作用的主导因素[10-13]。王晨等[14]发现, 随着胁迫强度的增加, 甜高粱幼苗茎叶鲜重呈下降趋势, 相对电导率和脯氨酸含量均呈上升趋势, 而SOD活性则表现出先升后降趋势。刘晓静等[15]研究表明, 随着盐浓度的升高, 紫花苜蓿幼苗叶绿素含量呈先增加后减少趋势。闫艳华等[16]指出, 随着盐pH的升高, 番茄幼苗受害加重, MDA含量增加, SOD、POD活性呈先升高后降低趋势。
柳树为杨柳科柳属(Salix)植物, 其树干高大通直, 生长快, 寿命长, 材质优, 抗性强, 既是重要的园林绿化植物, 也是用材林和农田防护林的常用树种[17]。目前, 关于柳树耐盐性的研究主要以中性盐NaCl胁迫[18]和碱性盐Na2CO3、NaHCO3胁迫[19-20]为主, 而其对于混合盐碱胁迫的响应研究较少。“盐柳1号”(Salix psammophila ‘Yanliu NO. 1’)来源于内蒙古沙漠地带的灌木北沙柳, 是山东省林业科学研究院经过十多年的研究和选育, 从中选育出的一个乔木品种。本研究将NaCl、Na2SO4、NaHCO3、Na2CO3按不同比例混合, 模拟出12种盐度和碱度各不相同的盐碱条件, 对盐柳1号盆栽幼苗进行处理, 研究混合盐碱胁迫对盐柳1号幼苗生长和渗透调节物质含量的影响, 以探索盐柳1号的耐盐碱范围和耐盐碱生理特性。
1 材料与方法 1.1 材料培养试验材料为柳树无性系“盐柳1号”(山东省林业科学研究院提供), 取长15 cm、直径1 cm左右的柳树当年生插条, 于2016年3月份定植于口径和高均为15 cm的塑料花盆内, 栽培基质为洗净的河沙和适量珍珠岩, 并用多菌灵进行消毒。每盆1株, 每3盆一组作为3个重复。扦插定植后, 用1/2Hogland营养液进行浇灌并在温室内培养, 温室内的昼夜温度为25/18℃。培养45 d后, 选取长势相对一致的柳树幼苗进行试验。
1.2 模拟盐碱设计将2种中性盐NaCl、Na2SO4和2种碱性盐NaHCO3、Na2CO3按不同比例混合, 按碱性盐比例逐渐增大的顺序分成3个处理组(分别用A、B、C表示)。每组内设4个浓度梯度(分别用1、2、3、4表示), 其混合盐总浓度依次为50、100、150、200 mmol/L, 其中A1表示A处理组浓度为50 mmol/L的处理, 依此类推。共模拟出12个混合盐碱组合。从表 1可以看出, 组内pH值的变化明显小于组间, 因此分析数据时以同组各浓度pH值的平均值作为该组的pH值, 所以A、B、C处理组的pH值分别为8.04、8.66、9.47。
处理组 Treatment group |
盐分组成与摩尔比 Salt composition and molar ratio |
各盐浓度(mmol/L)处理组对应的pH pH values corresponding to various salinity treatments (mmol/L) | |||||||
NaCl | Na2SO4 | NaHCO3 | Na2CO3 | 0 | 50 | 100 | 150 | 200 | |
CK | 0 | 0 | 0 | 0 | 6.87 | — | — | — | — |
A | 1 | 2 | 1 | 0 | — | 7.91 | 8.01 | 8.09 | 8.16 |
B | 1 | 9 | 9 | 1 | — | 8.47 | 8.62 | 8.71 | 8.84 |
C | 1 | 1 | 1 | 1 | — | 9.33 | 9.47 | 9.51 | 9.56 |
“A”表示按NaCl:Na2SO4:NaHCO3:Na2CO3 = 1:2:1:0比例配成混合盐溶液的处理组;“B”表示按NaCl:Na2SO4:NaHCO3:Na2CO3 =1:9:9:1比例配成混合盐溶液的处理组;“C”表示按NaCl:Na2SO4:NaHCO3:Na2CO3 = 1:1:1:1比例配成混合盐溶液的处理组 |
选13组长势相对一致的柳树幼苗, 1组浇1/2Hogland营养液作为对照, 其余12组进行A1—A4、B1—B4、C1—C4的编号, 分别用含有相应浓度的混合盐溶液进行胁迫处理, 处理间隔为3 d, 每次浇100 mL/盆。为避免盐冲击现象, 胁迫处理时盐浓度每次增加50 mmol/L, 直至达到设定浓度。处理期间, 定期定量补水。胁迫处理14 d后采集柳树幼苗相应部位的功能叶片进行指标测定。
1.4 指标测定 1.4.1 株高生长量的测定测定胁迫前后各处理组柳树幼苗的株高H1和H2, 株高生长量=胁迫后的株高H2-胁迫前的株高H1。
1.4.2 丙二醛(MDA)含量的测定[21]称取0.5 g植物样品, 先加10%三氯乙酸(TCA)2 mL, 研磨匀浆后再加入3 mL TCA进一步研磨, 研磨后所得匀浆在3000 r/min下离心10 min, 取所得上清液2 mL于带塞玻璃试管中, 加入0.5%硫代巴比妥酸(TBA)溶液2 mL, 混合后于沸水浴上反应20 min, 迅速冷却后离心, 上清液分别于532、600、450 nm波长下测定吸光度值。对照管以2 mL蒸馏水代替提取液。
1.4.3 脯氨酸含量的测定[22]称取0.5 g植物样品置带塞玻璃试管中, 加入5 mL 3%磺基水杨酸溶液, 在沸水浴中提取10 min(提取过程中要经常摇动), 冷却后过滤于干净的试管中, 滤液即为脯氨酸的提取液。吸取2 mL提取液于另一干净的带塞玻璃试管中, 加入2 mL冰醋酸及2 mL酸性茚三酮试剂, 在沸水浴中加热30 min, 溶液即呈红色。冷却后加入4 mL甲苯, 摇荡30 s, 取上层液在3000 r/min下离心5 min。轻轻吸取上层脯氨酸红色甲苯溶液于比色皿中, 以甲苯为对照, 在520 nm波长处比色, 求得吸光度值。
1.4.4 可溶性糖含量的测定[22]称取0.3 g植物样品, 剪碎, 放入带塞玻璃试管中, 加入10 mL蒸馏水, 于沸水中提取30 min(提取2次), 提取液过滤入25 mL容量瓶中, 反复漂洗试管及残渣, 定容至刻度。吸取样品提取液0.5 mL于20 mL刻度试管中, 加蒸馏水1.5 mL, 然后向试管中加入0.5 mL蒽酮乙酸乙酯试剂和5 mL浓硫酸, 充分震荡, 立即将试管放入沸水浴中, 逐管均保温1 min, 取出后自然冷却至室温, 以空白作参比, 在630 nm波长下测定吸光度值。
1.5 数据处理运用Excel 2016、SPSS 19.0对试验数据进行处理和分析, 采用单因素方差分析对不同盐浓度和不同pH值下各生理指标的差异性进行显著性分析, 多重比较采用Duncan法。
2 结果与分析 2.1 盐碱胁迫对柳树幼苗株高生长量的影响衡量植物耐盐性最直接的指标就是盐胁迫后植株的高度, 它是体内各种代谢反应的综合表现[23]。在混合盐碱胁迫下, 盐柳1号幼苗的生长受到了不同程度的抑制。如图 1所示, 随着盐浓度的增大, A、B、C处理组的株高生长量均呈降低趋势, 且均显著低于CK(P < 0.05), 并在盐浓度200 mmol/L时均降至最小值。其中, A处理组的株高生长量相对CK依次降低了27.20%、45.48%、53.18%、61.32%;B处理组的株高生长量与CK相比依次降低了29.65%、46.82%、63.77%、68.67%;C处理组幼苗的株高生长量与CK相比依次降低了31.22%、55.96%、66.33%、73.02%, 且在盐浓度高于150 mmol/L时叶片全部枯黄。在同等盐浓度条件下, 随着碱性盐比例(pH值)的增高, 盐柳1号幼苗的株高生长量均呈降低趋势。在盐浓度50、100和150 mmol/L时, A、B、C处理组的株高生长量差异均不显著(P > 0.05)。
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图 1 混合盐碱胁迫对柳树幼苗株高生长量的影响 Fig. 1 Effect of complex saline-alkali stress on plant height increment of willow seedlings “A”表示按NaCl:Na2SO4:NaHCO3:Na2CO3 =1:2:1:0比例配成混合盐溶液的处理组;“B”表示按NaCl:Na2SO4:NaHCO3:Na2CO3 =1:9:9:1比例配成混合盐溶液的处理组;“C”表示按NaCl:Na2SO4:NaHCO3:Na2CO3 =1:1:1:1比例配成混合盐溶液的处理组; 不同小写字母表示在0.05水平上差异显著 |
盐碱胁迫下植物体内氧自由基代谢失衡, 细胞膜受到活性氧攻击产生膜质过氧化, 最终细胞膜的结构和功能遭到破坏。如图 2所示, 随着盐浓度的增大, A、B、C处理组的MDA含量均呈整体升高趋势, 且均高于或显著高于CK。其中, A处理组的MDA含量增幅较小, 与CK相比差异均不显著(P > 0.05);B处理组的MDA含量在盐浓度大于100 mmol/L时开始显著增加(P < 0.05);C处理组的MDA含量均显著高于CK(P < 0.05)。A、B处理组的MDA含量在盐浓度200 mmol/L时均达到最大值, 分别相对CK增加了23.82%、154.29%;C处理组的MDA含量在盐浓度100 mmol/L时达到最大值, 与CK相比显著增加了41.83%(P < 0.05)。在盐浓度50 mmol/L时, A、B、C处理组的MDA含量差异均不显著(P > 0.05)。
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图 2 混合盐碱胁迫对柳树幼苗叶片丙二醛含量的影响 Fig. 2 Effect of complex saline-alkali stress on MDA content in leaves of willow seedlings |
游离脯氨酸是一种可溶性蛋白, 与水具有极强的吸附性, 是参与植物渗透调节的主要物质之一。如图 3所示, 随着盐浓度的增大, A、B、C处理组的游离脯氨酸有不同程度的积累。其中, A、C处理组的脯氨酸含量均呈先升高后降低趋势, 且分别在盐浓度150、50 mmol/L时达到最大值, 分别相对CK增加了72.58%、14.66%;B处理组的脯氮酸含量在盐浓度150 mmol/L时达到最大值, 与CK相比显著增加了158.75%(P < 0.05)。从整体来看, A、C处理组的脯氨酸含量增幅较小, 与CK相比差异均不显著(P > 0.05);B处理组的脯氨酸含量在100 mmol/L以下盐浓度范围内增加缓慢, 而在高盐胁迫下骤然增加。在同等盐浓度条件下, A、B、C处理组的脯氨酸含量差异均不显著(P > 0.05)。
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图 3 混合盐碱胁迫对柳树幼苗叶片脯氨酸含量的影响 Fig. 3 Effect of complex saline-alkali stress on proline content in leaves of willow seedlings |
随着盐浓度的增大, A、B、C处理组的叶片可溶性糖含量呈间断性积累(图 4)。其中, A处理组的叶片可溶性糖含量呈先升高后降低趋势, 与CK相比差异均不显著(P > 0.05), 并在盐浓度100 mmol/L时达到最大值, 相对CK增加了35.25%;B处理组的可溶性糖含量在盐浓度150 mmol/L时开始显著增加, 在盐浓度200 mmol/L时达到最大值, 与CK相比显著增加了313.99%(P < 0.05);C处理组的叶片可溶性糖含量均显著高于CK(P < 0.05), 且在盐浓度100 mmol/L时达到最大值, 与CK相比显著增加了48.45%(P < 0.05)。在盐浓度50 mmol/L时, A、B、C处理组的可溶性糖含量差异均不显著(P > 0.05)。
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图 4 混合盐碱胁迫对柳树幼苗叶片可溶性糖含量的影响 Fig. 4 Effect of complex saline-alkali stress on soluble sugar content in leaves of willow seedlings |
方差分析表明(表 2), 不同盐浓度和盐组合(pH值)以及两者间的交互作用对盐柳1号幼苗的叶片MDA含量和可溶性糖含量的影响均达到极显著(P < 0.01);不同盐浓度对株高生长量和脯氨酸含量的影响均达极显著水平(P < 0.01);不同pH值对株高生长量的影响达到极显著(P < 0.01), 对脯氨酸含量的影响不显著(P > 0.05);交互作用对株高生长量和脯氨酸含量的影响均不显著(P > 0.05)。盐浓度对各胁变指标的影响明显大于pH值的影响。
胁变指标 Strain index |
盐浓度Salinity | pH | 盐浓度× pH Salinity × pH | |||
F | P | F | P | F | P | |
株高生长量Plant height increment | 215.506 | 0.000** | 7.441 | 0.002** | 1.018 | 0.444NS |
丙二醛含量MDA content | 13.061 | 0.000** | 31.349 | 0.000** | 4.509 | 0.003** |
脯氨酸含量Proline content | 6.118 | 0.001** | 0.828 | 0.448NS | 1.753 | 0.149NS |
可溶性糖含量Soluble sugar content | 15.241 | 0.000** | 14.132 | 0.000** | 9.220 | 0.000** |
“*”表示差异显著, P < 0.05 (*: significant difference P < 0.05); “**”表示差异极显著, P < 0.01 (**: significant difference P < 0.01); “NS”表示差异不显著, P > 0.05 (NS: not significant) |
植物在环境胁迫下生长会受到抑制, 混合盐碱胁迫对植物生长的影响尤为显著[24]。本研究中, 在混合盐碱胁迫下, 盐柳1号幼苗的生长受到了不同程度的抑制。A、B、C处理组的株高生长量随着盐浓度、pH值的递增均呈降低趋势, 尤其是在碱性盐比例较高的C处理组(pH值为9.47), 在高盐胁迫下盐柳1号幼苗的叶片全部枯黄(C3、C4)。这说明在混合盐碱胁迫下, 盐柳1号幼苗不仅受到盐浓度的影响, 而且还受到高pH的协同作用, 这与李玉梅在牛叠肚幼苗上的研究结果类似[25]。
植物遭受逆境胁迫时细胞膜首先会受到伤害, 丙二醛(MDA)是植物膜脂过氧化的产物, MDA含量越高, 说明植物受伤害的程度越大[26]。闫永庆等[27]研究表明, 随着盐、碱浓度的加大, 白刺叶片质膜所受伤害逐渐增大, MDA含量增加。本研究中, 在混合盐碱胁迫下, 盐柳1号幼苗的叶片MDA含量随着盐浓度的增大有不同程度的增加, 这表明氧自由基已诱发膜脂过氧化, 细胞膜受到不同程度的伤害。其中, A处理组的MDA含量增加幅度不大, 说明盐柳1号幼苗叶片质膜受伤害程度不大;B处理组的MDA含量在盐浓度高于100 mmol/L时骤然增加, 说明盐柳1号幼苗叶片膜质过氧化程度加剧, 植株受害加重;C处理组幼苗在盐浓度高于150 mmol/L时叶片全部枯黄, 说明盐柳1号幼苗已失去对盐碱胁迫的应激能力。
盐胁迫会造成植物渗透胁迫、膨压丧失[28], 植物体通过增加渗透调节物质来增大细胞质浓度, 以平衡液泡和细胞质的水势, 平衡渗透势, 防止液泡从细胞质中吸水, 避免细胞质这个代谢中心受到影响[29-31]。脯氨酸和可溶性糖是植物体内重要的渗透调节物质, 郝凤等[32]研究发现, 随着盐碱胁迫浓度的增大, 植物体在积累脯氨酸的同时, 糖的合成也增加。本研究中, 随着盐浓度的增大, 盐柳1号幼苗的叶片脯氨酸和可溶性糖含量均有所上升。在低盐胁迫下(100 mmol/L以下), A、B、C处理组的脯氨酸和可溶性糖含量变化均不明显;在高盐胁迫下(150 mmol/L以上), A处理组的脯氨酸和可溶性糖含量增加不显著, B处理组的脯氨酸和可溶性糖含量骤然增至最大值, C处理组幼苗的叶片全部枯黄。说明盐柳1号幼苗对混合盐碱胁迫具有一定的耐受性, 当超过耐受范围时植株大量积累脯氨酸和可溶性糖, 以此来缓解盐碱胁迫带来的伤害, 直至承受不住高盐高碱的胁迫作用而死。
混合盐碱胁迫并不是盐、碱两种胁迫的简单叠加, 而是有一定协同效应[33]。本研究中, 在低盐度时(50 mmol/L), pH值虽然由7.91增至9.33, 但叶片MDA含量、脯氨酸含量和可溶性糖含量的变化均不明显, 说明单纯碱胁迫作用较小;在低碱度时(A组), 虽然盐浓度由50 mmol/L增至200 mmol/L, 但叶片MDA含量、脯氨酸含量和可溶性糖含量的增加幅度不大, 说明单纯盐胁迫作用也较小。而当盐胁迫与碱胁迫共同作用时(C3、C4), 盐柳1号幼苗的叶片全部枯黄, 说明盐与碱的协同效应会对植物造成更大的伤害。
本研究结果表明, 在高盐低碱或高碱低盐的条件下盐柳1号幼苗可以正常生长, 盐浓度低于100 mmol/L的混合盐碱胁迫对盐柳1号的生理变化影响不大;盐浓度高于150 mmol/L, pH>9.51时会对盐柳1号造成较大的伤害。
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