文章信息
- 吕建伟, 李小鹏, 谢振丽, 朱琨, 谢志刚, 徐兴军, 王昌河.
- LÜ Jianwei, LI Xiaopeng, XIE Zhenli, ZHU Kun, XIE Zhigang, XU Xingjun, WANG Changhe.
- 小鼠肠道组织结构在低温环境下的适应性调整
- Morphological and histological plasticity in digestive tracts of cold-acclimated Kunming laboratory mice
- 生态学报. 2018, 38(23): 8660-8665
- Acta Ecologica Sinica. 2018, 38(23): 8660-8665
- http://dx.doi.org/10.5846/stxb201712262326
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文章历史
- 收稿日期: 2017-12-26
- 网络出版日期: 2018-09-26
2. 西安交通大学生命科学与技术学院, 西安 710049
2. School of Life Science and Technology, Xi'an Jiaotong University, Xi'an 710049, China
寒冷是北方野生小哺乳动物经常遇到的环境压力, 温度作为自然环境中最重要的影响因子之一, 对动物的生长发育、取食消化、代谢产热与繁殖活动等都会产生显著的影响[1-4]。作为动物处理、消化、吸收食物和获得能量的重要器官, 消化道的形态结构直接影响动物对食物的摄取和能量的吸收, 进而影响其生长发育与繁殖。消化道大小和形态的自我调节是动物获能策略的重要组成部分, 是动物对外界环境条件与自身生理需求作出的响应和适应性调整, 其变化与环境温度、食物质量[5-8]以及繁殖状况[9-10]等因素密切相关。因此, 研究长期冷暴露下小型啮齿动物消化道形态与组织结构的变化不仅有助于理解小型动物在低温环境下的取食与消化对策, 还对理解生物在极端温度环境下的能量代谢及其适应性调整具有重要的生物学意义。
小型动物主要通过消化道容积的改变和消化道壁组织结构的改变来调节其形态结构, 以适应其在不同环境及其不同生理条件下的能量需求。在环境温度低、能量需求增加或食物质量下降的情况下, 为满足代谢需求, 小型恒温动物通常会增加消化道容积或道壁组织结构以提高摄食量或提高消化效率。如, 张志强和王德华[11]对能蒙古太仆寺旗的长爪沙鼠肠道长度的季节变化进行了系统研究, 发现其小肠和大肠长度在春冬季最长、夏季最短。朱万龙等[12]发现横断山区大绒鼠小肠和盲肠长度随温度降低而显著增加。Del Valle等[13]则发现冷暴露条件下南美原鼠(Akodon azarae)小肠的长度和鲜重均大于对照组。宋志刚等人[14]发现长期冷暴露孕鼠(Microtus brandti)的胃、小肠、盲肠和结肠鲜重明显高于温暖环境下的孕鼠和非繁殖期雌鼠。目前大多的研究报道主要集中在消化道的长度及重量的变化上, 认为较长的消化道长度意味着较大的肠腔容量, 而较大的鲜重和干重则代表较复杂的肠道微结构和更为有效的消化与吸收效率[13]。
肠道是由肠绒毛、肠腺、毛细血管、毛细淋巴管及内层环肌与外层纵肌等组成的多层次的复杂而精密的组织结构, 这些结构的可变性与多变性是引起肠道组织针对外界环境做出适应性调整的重要方式。一般认为消化道容积的改变可能是由消化道长度或管径的变化引起的, 而其组织结构的变化主要表现为微绒毛数量、浆膜厚度、管壁厚度及其他组织结构的变化。因此, 长度和重量两个简单的指标无法真正体现肠道组织精细而复杂的可塑性变化[15]。如, Dou等的研究结果表明限制饮食将导致大鼠小肠萎缩, 表现为绒毛长和隐窝深的显著降低[16]。Samanya和Yamauchi发现喂食B. subtilis natto会抑制氨的产生、促进细胞有丝分裂进而导致小肠绒毛长度增加[17]。众所周知,低温条件可以引起小型哺乳动物能量需求的增加,然而, 小型哺乳类肠道组织结构的变化目前还不清楚。本研究对小鼠各肠道组织结构(消化道各器官的长度、鲜重、干重以及十二指肠的肠壁总厚度、绒毛高度、内半径、外半径)在长期冷暴露条件下所做出的适应性变化进行了系统分析, 不仅对长期处于低温条件下的小鼠消化道形态变化研究, 同时对小鼠消化道形态及其组织结构-横截面积在低温环境下的适应性调整进行了系统研究, 这为深入理解小型哺乳类在低温环境下的消化策略及其适应模式具有重要意义。
1 材料与方法 1.1 实验动物实验动物为20日龄的昆明小鼠, 将其随机分为常温对照饲养组(25℃)和低温饲养组(10℃)饲养, 除温度外其他饲养条件相同。饲养过程中每日打扫鼠舍, 添加鼠粮(江苏省协同医药生物工程有限责任公司)及清水, 每5日采用精度为1 g的电子秤测量小鼠体重, 共驯化3个月。
1.2 消化道形态结构测量按0.6 mL/100 g体重腹腔注射10%的水合氯醛(国药集团化学试剂有限公司)将实验小鼠进行麻醉, 首先使用300 mL的生理盐水进行心脏灌流, 原则是先快后慢。生理盐水灌流结束后, 改用200 mL 4%的多聚甲醛进行预固定, 小心的取出胃肠器官, 置于生理盐水中, 分离出胃(stomach, ST)、小肠(small intestine, SI)、大肠(large intestine, LI)及盲肠(caecum, CA), 小心剔除肠系膜及其他组织, 以生理盐水冲净内容物, 平展为最大长度, 但不要拉伸, 采用精度为1 mm的软尺测量小肠、盲肠、大肠的长度(length, L), 胃长采用精度为0.02 mm的游标卡尺进行测量;取十二指肠近胃2 cm处的片段, 置于10%的甲醛溶液中固定, 以备组织切片;用滤纸吸干剩余部分后用精度为0.1 mg的电子天平(赛多利斯科学仪器(北京)有限公司, BSA6202S-CW)称取各器官鲜重(empty, E);然后将各器官置于60℃烘箱内烘干12 h, 待重量稳定后称其重量并记录。
1.3 消化道组织结构观察与测量十二指肠为食物消化与营养吸收的主要场所, 因此本研究采用十二指肠作为主要实验材料, 经12—24 h的固定后, 经常规的水洗、脱水、透明、浸蜡和包埋处理, 在室温下用德国Leica组织切片设备进行切片, 切片厚度约8 μm, 切片用苏木精-伊红染色法进行染色, 封固后用德国Zeiss激光扫描共聚焦显微镜LSM510进行观察。选取绒毛完整、走向平直的经典视野采集图像, 并用Zeiss LSM Image Browser (Version 3.0)进行定量分析, 测定肠道截面积、肠腔截面积、肠壁总厚度、绒毛高度、绒毛宽度、直肠的环肌层厚度和纵肌层厚度等生理指标, 进行统计分析。
1.4 数据处理成像数据使用Zeiss LSM Image Browser(Version 3.0)和MBF ImageJ(NIH)进行统计和分析, 各指标均以平均值±标准差(Mean ± SE)表示, 采用Student′s t-test进行统计学检验, P<0.05被认为是差异显著。所有统计分析借助SPSS 13.0统计软件完成。
2 结果与分析 2.1 消化道的形态学变化常温及低温组小鼠的体尺测量及消化道各器官(胃、小肠、大肠、盲肠)的长度、鲜重与干重测量结果如表 1所示。低温饲养小鼠的体重(P < 0.05)、消化道总长(P < 0.01)均明显增加。胃长、胃鲜重、胃干重在两组小鼠之间均未表现出显著性差异(P>0.05), 提示胃容量和组织结构对外界环境温度变化的敏感性较低。低温组小鼠的小肠长度显著增加(P < 0.001), 但其鲜重却明显降低(P < 0.05)。低温小鼠大肠的长度和鲜重均未发生显著变化(P>0.05), 其干重显著增加(P < 0.05)。在长期冷暴露下, 小鼠盲肠的长度显著增加(P < 0.05)、但其鲜重和干重却未发生显著变化(P>0.05)。
指标Item | 低温组 Lower temperature 10℃ |
常温对照组 Control 25℃ |
P | |
体重Body weight/g | 41.100±3.4 | 31.400±1.1 | 0.033* | |
消化道总长Total length of digestive tract/cm | 80.200±3.900 | 67.400±2.800 | 0.003** | |
胃Stomach | 长度Length/cm | 2.167±0.084 | 1.943±0.121 | 0.160 |
鲜重Fresh weight/g | 0.175±0.009 | 0.201±0.017 | 0.207 | |
干重Dry weight/g | 0.047±0.003 | 0.047±0.004 | 0.882 | |
小肠Small intestine | 长度Length/cm | 64.817±1.016 | 53.400±2.109 | 0.001*** |
鲜重Fresh weight/g | 1.531±0.098 | 1.847±0.074 | 0.033* | |
干重Dry weight/g | 0.385±0.032 | 0.327±0.029 | 0.207 | |
大肠Large intestine | 长度Length/cm | 9.917±0.533 | 9.128±0.740 | 0.407 |
鲜重Fresh weight/g | 0.549±0.077 | 0.468±0.031 | 0.364 | |
干重Dry weight/g | 0.131±0.018 | 0.075±0.007 | 0.044* | |
盲肠Caecum | 长度Length/cm | 3.520±0.154 | 2.942±0.132 | 0.026* |
鲜重Fresh weight/g | 0.202±0.022 | 0.174±0.013 | 0.312 | |
干重Dry weight/g | 0.042±0.005 | 0.032±0.003 | 0.115 | |
* P < 0.05; ** P < 0.01; *** P < 0.001 |
运用组织切片技术分别对两组小鼠十二指肠的外径截面积、内径截面积、外径截面积-内径截面积、绒毛长度、绒毛宽度和肠壁总厚度以及直肠的截面积、环肌层厚度和纵肌层厚度进行观察和比较(图 1), 进而分析长期冷暴露对小鼠消化道各项组织学指标的影响, 统计结果见表 2。低温组小鼠的肠道和肠壁组织截面积均显著减少(P < 0.05), 而肠腔隙截面积则未发生显著变化(P>0.05), 暗示其肠道组织在低温环境下发生萎缩。与此相一致, 低温组小鼠的肠壁厚度也显著减小(P < 0.05)。与肠壁厚度降低相反, 低温组小鼠的绒毛高显著增加(P < 0.001), 而其宽度则未发生明显变化(P>0.05), 提示其黏膜层厚度增加, 而黏膜下层结构则趋于萎缩。在低温饲养条件下, 小鼠十二指肠的肌肉层厚度显著增加(P < 0.01)。
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图 1 常温与低温饲养小鼠十二指肠的组织切片 Fig. 1 Representative micro-graphs of duodenal sections of mice maintained at 25℃ (Control) or 10℃ The intestinal tissue was fixed with 10% formaldehyde solution, dehydrated in ascending series of ethanol, cleared in xylene, embedded in paraffin, sectioned, and stained with haematoxylin and eosin. The sections were observed with a Laser Scanning Confocal Microscope (LSM510, Zeiss). Scale bars: 500 μm for upper panels, 200 μm for middle panels, and 50 μm for lower panels |
指标 Item |
低温组 Lower temperature 10℃ |
常温对照组 Control 25℃ |
P |
肠道截面积Section area/mm2 | 2.9059±0.1490 | 3.4851±0.1943 | 0.038* |
肠腔截面积Lumen area/mm2 | 0.3693±0.0540 | 0.3599±0.0238 | 0.888 |
肠壁截面积Wall area/mm2 | 2.5066±0.1209 | 3.1253±0.1818 | 0.021* |
肠壁厚Wall thickness/μm | 550.3±11.94 | 589.7±13.24 | 0.044* |
绒毛高Villus height/μm | 409.7±12.89 | 330.0±12.92 | 0.0001*** |
绒毛宽Villus width/μm | 76.1±3.62 | 83.5±2.72 | 0.11 |
肌层厚Muscle thickness/μm | 17.5±0.97 | 13.9±0.78 | 0.002** |
* P < 0.05; ** P < 0.01; *** P < 0.001 |
寒冷是北方野生小哺乳动物冬季生存所要面临的最重要的环境压力之一, 作为动物处理、消化、吸收食物和获得能量的重要器官, 消化道的形态结构表现出极大的可塑性, 以适应它们在低温环境下的能量获取与分配的需求。然而, 小型哺乳类肠道组织结构是如何随外界环境变化而发生相应的适应性调整的目前还不清楚。本研究首次对小鼠消化道形态及其组织结构在低温环境下的适应性调整进行了系统研究, 结果表明, 低温小鼠肠道组织的形态结构及组织结构均已经产生了适应性调整, 它们主要通过增加消化道的长度和营养物质的吸收面积来增加食物摄取量、营养的吸收速率和吸收效率等, 进而满足其在低温条件下能量需求的增加。
低温饲养小鼠的体重(P < 0.05)、消化道总长(P < 0.01)均显著增加, 表明小鼠可能在寒冷环境下对能量需求很高, 并通过提高消化道容纳能力而获得更多的能量。同时, 低温组小鼠的小肠长度显著增加(P < 0.001), 肠腔横截面积没有发生明显变化, 提示小鼠肠道容量明显增加, 表明小鼠在寒冷环境下主要通过提高食物在小肠中的滞留时间和消化吸收面积而获得能量收支。低温组小鼠盲肠长度显著增加(P < 0.05), 暗示在寒冷环境下代谢率下降、食物利用率低下, 小鼠可能通过增加盲肠长度而额外获得部分能量。胃长、胃鲜重、胃干重在两组小鼠之间均未表现出显著性差异(P>0.05), 提示胃容量和组织结构对外界环境温度变化的敏感性较低。小肠, 十二指肠, 盲肠在寒冷环境下的变化表明消化道的形态结构表现出极大的可塑性, 以适应它们在低温环境下的能量需求。
十二指肠的组织结构测量结果表明, 低温组小鼠的肠道和肠壁组织截面积均显著减少(P < 0.05), 而肠腔隙截面积则未发生显著变化(P>0.05), 暗示其肠道组织在低温环境下发生萎缩。与此相一致, 低温组小鼠的肠壁厚度也显著减小(P < 0.05)。与肠壁厚度降低相反, 低温组小鼠的绒毛高显著增加(P < 0.001), 而其宽度则未发生明显变化(P>0.05), 提示其黏膜层厚度增加, 而黏膜下层结构则趋于退化, 表明小鼠在寒冷环境下通过提高消化和吸收营养物质的能力而增加能量获取。在低温饲养条件下, 小鼠十二指肠的肌肉层厚度显著增加(P < 0.01), 表明小鼠在寒冷环境下可以增加消化道蠕动力而增加消化与吸收效率。这些研究结果表明, 小型哺乳动物在寒冷环境下主要通过提高肠道组织的容纳量与黏膜层厚度及肠道蠕动能力等来提升单次摄食量、食物消化与营养吸收效率等来满足其高体温调节价下的能量需求。
综上所述, 本研究首次在组织水平研究了小型哺乳动物的消化道结构及其消化策略在低温环境下的适应性调整, 它们主要通过增加消化道长度、肠道表面积及肌肉层厚度等来提高其食物消化和营养吸收效率, 以便更好地适应环境温度变化导致的能量需求变化。
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