文章信息
- 贾慧, 王晟强, 郑子成, 李廷轩
- JIA Hui, WANG Shengqiang, ZHENG Zicheng, LI Tingxuan
- 植茶年限对土壤团聚体线虫群落结构的影响
- Effects of tea plantation age on soil nematode community characteristics within soil aggregate
- 生态学报. 2020, 40(6): 2130-2140
- Acta Ecologica Sinica. 2020, 40(6): 2130-2140
- http://dx.doi.org/10.5846/stxb201904010627
-
文章历史
- 收稿日期: 2019-04-01
- 网络出版日期: 2019-12-17
土壤线虫不仅是土壤生态系统中重要的生物类群[1], 同时也存在于食物网各个营养级和能量通道, 占据食物网的中心位置, 对于促进物质循环和能量流动具有重要意义[2-3]。团聚体作为土壤结构最基本的单元, 其组成比例和空间排列决定了土壤孔隙的分布与土壤的水气特征, 进而影响土壤线虫的生境[4-6]。可见, 土壤线虫群落结构可能与其在土壤团聚体的分布特征有关。故从土壤团聚体的角度探讨土壤线虫群落的变化, 将有助于揭示土壤线虫群落变化的本质。Briar等[7]研究发现, 线虫总数在微团聚体(< 0.25 mm)中数量高于0.25—1 mm粒径团聚体, 而Zhang等[8]研究则认为线虫在微团聚体中数量最少。也有研究表明线虫总数在团聚体中的分布规律均是随着团聚体粒径的减小而减少, 且最大值出现在>2 mm粒径团聚体, 这与Zhang等[9]和Jiang等[10]研究结果一致。可见, 线虫在土壤各粒径团聚体中分布各异。
茶树(Camellia sinensis)属山茶科山茶属, 为多年生常绿木本植物。近年来, 受退耕还林、经济发展、人口增长等因素的驱动, 川西低山丘陵区土地利用结构发生了较大变化, 退耕植茶已成为该区域主要退耕模式, 在产生经济效益和社会效益的同时, 其生态效益备受关注。课题组前期已对不同植茶年限土壤团聚体的有机碳、养分分布和微生物群落进行了探讨[11-13], 发现大粒径团聚体有机碳稳定性较低, 土壤养分和微生物的主要载体为>2 mm粒径团聚体, 且长期植茶有助于土壤有机碳、全氮、碱解氮和有效磷的积累。有机碳、养分和微生物在各粒径团聚体分布的差异均会影响土壤线虫的繁殖和发育[7-10], 因此, 长期植茶会引起土壤团聚体线虫群落分布的变化。本研究以川西低山丘陵区茶园土壤为研究对象, 探讨植茶年限对土壤团聚体线虫群落结构的影响, 旨在了解植茶过程中团聚体线虫群落的演变规律, 为揭示土壤食物网结构对植茶年限响应机理提供理论依据。
1 材料与方法 1.1 研究区概况研究区位于四川省雅安市名山区中峰乡万亩生态茶园(图 1), 属亚热带季风性气候, 年平均气温15.4℃, 无霜期294d, 年降雨量1500 mm左右, 6—9月份占全年降雨量的72.6%。地貌类型以丘陵台地为主, 土壤类型为第四纪老冲积物发育而成的黄壤。老川茶从20世纪50年代一直种植至今(其余品种均为引进), 形成了具有规模化不同种植年限的老川茶园。
![]() |
图 1 研究区域位置 Fig. 1 Location of the study site A、B、C和D分别代表植茶19、26、34和56年茶园 |
每年10月中旬, 茶园施用猪圈肥15000 kg/hm2, K2SO4型复合肥(质量比N:P2O5:K2O=20:8:8)750 kg/hm2, 沿树冠边缘垂直下方开沟, 依次加入复合肥、猪圈肥, 最后覆土。每年追肥3次, 春茶追肥时期在2月中旬, 施用复合肥1500 kg/hm2, 尿素600 kg/hm2;夏茶追肥时期在5月下旬, 施用复合肥750 kg/hm2, 尿素300 kg/hm2;秋茶追肥时期在7月下旬, 施入复合肥750 kg/hm2, 尿素300 kg/hm2。追肥位置与基肥相同。老川茶树修剪方式以轻修剪为主, 每年修剪一次, 在秋茶采摘后剪去树冠面上的突出枝条和树冠表层3—10 cm枝叶, 然后归还土壤。
1.2 土样采集与处理在野外调查的基础上, 于2018年7月, 综合考虑茶园的地质地貌条件和经营措施等, 选择成土母质相同、地块相对集中且经营措施相似的不同植茶年限(19年、26年、34年和56年)老川茶园土壤为采样对象。在每个茶园中按“品”字形布设3个典型样方(15 m×15 m), 各样方间距离50 m, 每个样方内按“S”形设置5个采样点, 具体采样位置设在树冠边缘垂直下方。将这5点土样混合作为1次重复, 每个茶园重复3次。在0—5 cm采集原状土样, 尽量避免挤压, 以保持原状土样结构。将采集的12个混合土壤样品沿自然结构轻轻掰开, 过5 mm筛除去动植物残体和小石块等, 然后置于4℃冰箱保存, 供土壤团聚体分级和线虫的分离鉴定。采样点基本情况见表 1。
指标 Item |
植茶年限Tea plantation age/a | |||
19 | 26 | 34 | 56 | |
容重Bulk density/(g/cm3) | 1.25±0.06ab | 1.22±0.04b | 1.27±0.08ab | 1.29±0.03a |
pH | 4.19±0.01a | 4.18±0.01a | 4.13±0.02b | 3.97±0.01c |
砂粒Sand/% | 35.01±0.18a | 36.42±0.10a | 35.78±0.14a | 34.37±0.18a |
粉粒Silt/% | 30.94±0.10a | 30.71±0.13a | 30.72±0.18a | 31.01±0.08a |
黏粒Clay/% | 34.05±0.07a | 32.87±0.19a | 33.50±0.10a | 34.62±0.08a |
有机碳Organic C/(g/kg) | 15.01±0.38c | 17.63±0.29b | 19.05±0.35a | 19.68±0.20a |
全氮Total N/(g/kg) | 0.62±0.02c | 0.62±0.01c | 0.68±0.01b | 0.80±0.01a |
碱解氮Available N/(mg/kg) | 33.94±0.64c | 37.78±1.09b | 39.78±0.87ab | 41.25±1.43a |
有效磷Available P/(mg/kg) | 20.82±0.79c | 20.55±1.47c | 23.00±1.10b | 26.30±1.41a |
速效钾Available K/(mg/kg) | 56.74±1.40a | 46.80±0.58b | 45.61±1.40b | 36.60±1.03c |
同行不同小写字母表示数据在不同植茶年限间差异达5%显著水平 |
为了减少对土壤生境的破坏, 在4℃冰箱下风干至含水量10%左右, 采用干筛法[14]将其分为>2 mm、2—1 mm、1—0.25 mm和 < 0.25 mm粒径团聚体(表 2)。
植茶年限 Tea plantation age/a |
土壤团聚体组成Composition of soil aggregate fractions/% | |||
>2 mm | 2—1 mm | 1—0.25 mm | < 0.25 mm | |
19 | 47.27±0.02Ad | 24.39±0.02Ba | 23.89±0.02Ba | 4.46±0.01Ca |
26 | 77.52±0.03Aa | 10.89±0.01Bc | 8.50±0.01BCb | 3.09±0.01Ca |
34 | 69.37±0.05Ab | 15.04±0.02Bbc | 11.18±0.02Bb | 4.41±0.01Ca |
56 | 56.85±0.05Ac | 19.58±0.02Bab | 18.43±0.02Ba | 5.14±0.01Ca |
同行不同大写字母表示数据在不同粒径团聚体间差异达5%显著水平, 同列不同上标字母表示数据在不同植茶年限间差异达5%显著水平 |
土壤线虫分离采用改良的Baermann漏斗法[15], 每个样品称取土样50 g, 置于烘虫箱内分离, 48 h后用离心管收集线虫, 60℃温热杀死后, 用三乙醇胺和福尔马林(TAF)固定, 分离所得的土壤线虫在OLYMPUS BX51显微镜下直接计数。并根据土壤的自然含水量, 将土壤线虫数量换算成每100 g干土中线虫的数量。从每个样品中随机抽取100条线虫在OLYMPUS BX51显微镜下参考《长白山森林土壤线虫》[16]、《中国淡水和土壤线虫研究》[17]和《Soil And Freshwater Nematodes》[18]进行科属鉴定(不足100条的全部鉴定)。利用OLYMPUS BX51显微镜及其数码显微成像系统对观测到的线虫优势属及常见属进行拍照记录。采用形态法根据线虫头部和取食生境将线虫划分为食细菌线虫(Bacterivores, Ba)、食真菌线虫(Fungivores, Fu)、植食线虫(Plant-parasites, Pp)和捕食/杂食线虫(Omnivores-Predators, OP) 4个营养类群[19]。
1.5 数据处理各类群数量优势度的划分:个体数量占总捕获量10%以上者为优势类群, 个体数占总捕捕获量1%—10%为常见类群, 个体数占总捕获量 < 1%以下为稀有类群[16]。试验鉴定出线虫属的数量作为线虫的类群数。
根据Bongers划分线虫的不同生活史c-p(colonizer-persister)值。线虫的生态指数按以下公式[20]计算:
富集指数(Enrichment index, EI)=100×e/(e+b)
结构指数(Structure index, SI)=100×s/(b+s)
式中, e为食物网中的富集成分, 主要指食细菌线虫中c-p值为1和食真菌线虫c-p值为2的类群;b代表食物网中的基础成分, 主要指食细菌线虫和食真菌线虫中c-p值为2的类群;s代表食物网中的结构成分, 分别为食细菌线虫、食真菌线虫和杂食/捕食线虫中c-p值为2的类群。
采用DPS 11.0进行试验数据统计分析, 采用双因素方差分析(two-way ANOVA)和最小显著差异法(LSD)比较不同植茶年限团聚体线虫多度、类群数量和营养类群的差异;图表制作采用Excel 2010和Origin 9.0。各图表中数据均为平均值±标准误。
2 结果与分析 2.1 土壤团聚体线虫群落组成本研究共捕获线虫6602条, 隶属于46属, 平均为421条/(100g)干土。其中, 食细菌线虫17属, 食真菌线虫6属, 植食线虫17属, 杂食/捕食线虫6属。拟丽突属Acrobeloides为优势属, 相对多度达33.3%—53.3%, 盆咽属Panagrolaimus和小杆属Rhabditis等为常见属, 矛线属Dorylaimus和瘤咽属Tylencholaimellus等为稀有属(表 3)。
线虫属(c-p值) Nematode Genera/Family (c-p value) |
植茶年限Tea plantation age/a | ||||||||||||||||||
19 | 26 | 34 | 56 | ||||||||||||||||
土壤团聚体粒径Soil aggregate size/mm | |||||||||||||||||||
>2 | 2—1 | 1—0.25 | < 0.25 | >2 | 2—1 | 1—0.25 | < 0.25 | >2 | 2—1 | 1—0.25 | < 0.25 | >2 | 2—1 | 1—0.25 | < 0.25 | ||||
盆咽属Panagrolaimus (Ba1) | 6.7 | 13.5 | 6.5 | 20.0 | 7.0 | 9.0 | 5.1 | 12.9 | 3.3 | 10.0 | 8.7 | 12.8 | 2.3 | 6.7 | 8.1 | 9.9 | |||
原杆属Protorhabditis (Ba1) | 2.7 | 7.3 | 2.4 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 2.3 | 5.0 | 4.3 | 0.0 | 0.3 | 1.3 | 0.0 | 5.3 | |||
小杆属Rhabditis (Ba1) | 4.3 | 0.0 | 14.6 | 0.0 | 3.0 | 9.7 | 4.4 | 9.7 | 1.7 | 5.6 | 6.3 | 7.7 | 1.0 | 8.0 | 7.7 | 7.0 | |||
扭钩属Plectonchus (Ba1) | 3.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.7 | 0.0 | 0.3 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | |||
中杆属Mesorhabditis (Ba1) | 0.0 | 7.8 | 0.8 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.3 | 0.0 | 1.3 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | |||
三等齿属Pelodera (Ba1) | 0.7 | 0.5 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 1.3 | 2.7 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | |||
广杆属Caenorhabditis (Ba1) | 11.3 | 0.0 | 0.0 | 8.9 | 10.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 10.0 | 3.3 | 0.0 | 6.0 | 13.0 | 0.0 | 2.1 | 2.3 | |||
拟丽突属Acrobeloides (Ba2) | 45.7 | 45.8 | 45.5 | 33.3 | 47.0 | 49.0 | 50.2 | 44.1 | 50.3 | 48.7 | 49.3 | 42.7 | 53.3 | 52.0 | 49.1 | 46.8 | |||
头叶属Cephalobus (Ba2) | 3.3 | 5.2 | 7.3 | 0.0 | 2.0 | 6.0 | 6.1 | 1.1 | 3.3 | 3.3 | 3.0 | 3.4 | 1.7 | 2.0 | 3.2 | 0.6 | |||
威尔斯属Wilsonema (Ba2) | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 1.3 | 1.1 | 0.0 | |||
连胃属Chronogaster (Ba2) | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 3.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | |||
真头叶Eucephalobus (Ba2) | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.7 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | |||
板唇属Chiloplacus (Ba2) | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 1.3 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | |||
板环属Placodira (Ba3) | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 1.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | |||
棱咽属Prismatolaimus (Ba3) | 18.3 | 11.5 | 13.0 | 0.0 | 15.0 | 6.7 | 7.1 | 0.0 | 14.3 | 19.3 | 20.0 | 0.0 | 13.3 | 13.7 | 21.1 | 0.0 | |||
真畸头属Euteratocephalus (Ba3) | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 22.2 | 0.0 | 1.3 | 4.7 | 14.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 19.7 | 0.0 | 0.0 | 0.4 | 22.2 | |||
畸头属Teratocephalus (Ba3) | 0.0 | 1.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | |||
假海矛属Pseudhalenchus (Fu2) | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 1.3 | 0.0 | 0.0 | |||
茎属Ditylenchus (Fu2) | 0.3 | 1.0 | 2.4 | 2.2 | 6.0 | 7.3 | 7.4 | 3.2 | 3.0 | 2.0 | 0.7 | 1.7 | 4.3 | 3.3 | 1.1 | 1.8 | |||
滑刃属Aphelenchoides (Fu2) | 0.0 | 2.1 | 0.0 | 0.0 | 2.0 | 0.7 | 3.7 | 3.2 | 1.7 | 1.0 | 1.3 | 0.9 | 2.0 | 2.3 | 1.4 | 2.9 | |||
真滑刃属Aphelenchus (Fu2) | 0.7 | 0.0 | 1.6 | 2.2 | 1.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.3 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.3 | 0.7 | 0.0 | 0.6 | |||
膜皮属Diphtherophora (Fu3) | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.3 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | |||
瘤咽属Tylencholaimellus (Fu4) | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.3 | 0.7 | 0.0 | |||
垫刃属Tylenchus (Pp2) | 1.0 | 0.5 | 2.4 | 0.0 | 3.0 | 2.0 | 1.7 | 5.4 | 1.7 | 1.7 | 1.0 | 2.6 | 5.0 | 3.0 | 0.7 | 1.8 | |||
叉针属Boleodorus (Pp2) | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.7 | 1.1 | 0.0 | 0.7 | 0.0 | 0.0 | 0.3 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | |||
针属Paratylenchus (Pp2) | 0.0 | 0.5 | 0.0 | 4.4 | 0.0 | 0.7 | 0.3 | 0.0 | 3.3 | 0.7 | 1.3 | 0.0 | 0.3 | 1.3 | 0.7 | 0.0 | |||
丝尾垫刃属Filenchus (Pp2) | 0.3 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 1.0 | 0.0 | 0.3 | 0.0 | 1.3 | 0.0 | 0.7 | 0.0 | 0.7 | 0.0 | 0.0 | 2.9 | |||
野外垫刃属Aglenchus (Pp2) | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.3 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.3 | 0.0 | 0.0 | |||
裸矛属Psilenchus (Pp2) | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.7 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.3 | 1.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.4 | 0.0 | |||
粒属Anguina (Pp2) | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.3 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | |||
细纹垫刃属Lelenchus (Pp2) | 0.0 | 0.5 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 1.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.7 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | |||
具脊垫刃属Coslenchus (Pp2) | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.3 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | |||
头垫刃属Cephalenchus (Pp2) | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.7 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | |||
柄端球属Paurodontus (Pp3) | 0.3 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 1.3 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.3 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | |||
矮化属Tylenchorhynchus (Pp3) | 0.3 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 1.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.3 | 0.0 | 0.0 | 0.3 | 0.7 | 0.0 | 0.0 | |||
拟盘旋属Pararotylenchus (Pp3) | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.3 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | |||
短体属Pratylenchus (Pp3) | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 1.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | |||
盘旋属Rotylenchus (Pp3) | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.3 | 0.0 | 0.0 | |||
中轮属Criconemoides (Pp3) | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.3 | 0.3 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | |||
剑属Xiphinema (Pp5) | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.3 | 0.4 | 0.0 | |||
真矛线属Eudorylaimus (OP4) | 1.0 | 1.6 | 4.1 | 6.7 | 0.7 | 0.7 | 1.0 | 3.2 | 0.0 | 0.7 | 0.3 | 2.6 | 1.0 | 0.3 | 1.8 | 0.6 | |||
中矛线属Mesodorylaimus (OP4) | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 1.0 | 0.0 | 0.3 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | |||
矛线属Dorylaimus (OP4) | 0.0 | 0.5 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.3 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.3 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.3 | 0.4 | 0.0 | |||
金线属Chrysonema (OP4) | 0.0 | 1.0 | 0.8 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.3 | 0.0 | 0.6 | |||
锉齿属Mylonchulus (OP4) | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.3 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | |||
穿咽属Nygolaimus (OP5) | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.3 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | 0.0 | |||
c-p:生活史策略colonizer-persister;Ba:食细菌线虫Bacterivores;Fu:食真菌线虫Fungivores;Pp:植食线虫Plant-parasites;OP:捕食/杂食线虫Omnivores-Predators;Bax、Fux、Ppx、OPx, x指c-p值 |
由图 2可知, 随着植茶年限的延长, >0.25 mm各粒径团聚体土壤线虫数量呈单峰的变化趋势, 且在植茶26年时显著高于其他年限, 而25 mm团聚体线虫数量则随着植茶年限的延长逐渐增加。各植茶年限土壤线虫数量随粒径的增大而增加, 在>2 mm粒径团聚体中最高。
![]() |
图 2 不同植茶年限土壤团聚体中线虫多度和类群数 Fig. 2 Abundance of total nematodes and the group number of nematodes genera within aggregate fractions under the four tea plantations with different ages 不同小写字母表示数据在不同粒径团聚体间差异达5%显著水平, 不同上标字母表示数据在不同植茶年限间差异达5%显著水平 |
由图 2可知, 随着植茶年限的延长, 线虫类群数在>2 mm粒径中均未达到显著差异, 在2—1 mm和25 mm粒径团聚体中逐渐升高, 在1—0.25 mm粒径中则先升高后降低。而随着粒径的减小, 各植茶年限线虫类群数均逐渐减少。
2.2 土壤团聚体线虫营养类群结构由图 3可知, 土壤线虫各营养类群数量差异明显。不同植茶年限土壤团聚体食细菌线虫数量最高(896—28.1条/(100g)), 占土壤线虫总数的83%—96%;其次是食真菌线虫和植食线虫, 其数量分别为1.5—96条/(100g)和1.5—64条/(100g), 分别占土壤线虫总数的1%—11%和1.6%—8%;而杂食/捕食线虫数量最少(1.5—10.7条/(100g)), 占土壤线虫总数的1%—6.7%。可见, 在本研究中食细菌线虫在不同营养类群中占绝对优势。
![]() |
图 3 不同植茶年限土壤团聚体中线虫营养类群的多度 Fig. 3 Abundance of nematode trophic groups within aggregate fractions under the four tea plantations with different ages |
与土壤线虫总数相似, 食细菌线虫、食真菌线虫和植食线虫在>0.25 mm各粒径团聚体数量呈现单峰的变化趋势, 在植茶26年时显著高于其他年限;而在25 mm粒径团聚体中, 食细菌线虫数量逐渐升高, 食真菌线虫和植食线虫数量差异不显著。随着粒径的减小, 各植茶年限食细菌线虫、食真菌线虫和植食线虫数量逐渐减少。杂食/捕食线虫数量在各植茶年限和粒径间, 均未达到显著差异。
2.3 土壤团聚体线虫群落生态指数由图 4可知, SI值多数均小于50(除25 mm粒径), EI值均大于50。随着植茶年限的延长, >2 mm粒径团聚体中线虫区系分布逐渐从B象限向D象限方向靠拢;2—0.25 mm粒径团聚体中线虫区系分布不一, 而25 mm粒径团聚体中线虫分布逐渐从A象限向B象限方向靠拢。各植茶年限均随着粒径的减小, 线虫区系分布逐渐从A象限向B象限方向靠拢。
![]() |
图 4 不同植茶年限土壤团聚体中线虫区系分析 Fig. 4 Nematode faunal analysis of cucumber within aggregate fractions under the four tea plantations with different ages |
土壤线虫总数的变化体现了土壤资源的总体有效性[21]。在本研究中, 除25 mm粒径团聚体外, 其余粒径在植茶26年时线虫数量显著高于其他年限, 这主要因为植茶26年茶树凋落物中易分解组分相对较多[11], 土壤活性有机碳有所积累, 进而有利于大粒径团聚体的形成与稳定;其次, 该植茶年限土壤微生物量在大粒径团聚体中处于较高水平[22], 为线虫繁殖发育提供了大量的食源。此外, 该植茶年限茶树凋落物C:N为15.72[22], 易于形成品质好的软腐殖质。而土壤腐殖质品质影响线虫数量的多少, Yeates[23]研究表明, 凋落物C:N等于13.8时, 土壤线虫密度为4224×103条/(100m2), 当C:N升高到18.3时, 土壤线虫密度则降低到2133×103条/(100m2)。可见, 植茶26年土壤含有更多适宜线虫生长繁殖的较大粒径团聚体, 并且可以提供其生长繁殖的大量食源, 故线虫在该植茶年限土壤中易于聚集。
Briar等[7]研究发现, 线虫总数在团聚体中的分布状况因管理方式的不同而异, 如常规种植番茄, 线虫总数的最大值出现在>l mm粒径团聚体, 而在有机种植条件下线虫总数的最大值出现在 < 1 mm粒径团聚体。而在本研究中, 各植茶年限在>0.25 mm粒径团聚体中土壤线虫数量随着粒径的减小而减少。表明植茶年限不影响线虫在团聚体中的分布情况, 这和Zhang等[9]研究结果一致。不同粒径团聚体导致土壤空隙状况差异, 进而影响土壤线虫分布。Hassink等[24]发现线虫的数量和土壤中30—90 μm的孔隙数量成正相关;Briar等[7]发现土壤线虫在0.25—1 mm粒径团聚体中密度低。而本研究却发现>2 mm粒径团聚体中线虫总数最高, 表明大粒径团聚体更适合线虫生存。一方面是因为大粒径团聚体中包裹着较多数量的新鲜有机质[22];另一方面大粒径团聚体孔隙度好, 良好的通气性, 为线虫的繁殖提供了适宜的生存环境。表明>2 mm粒径团聚体的形成与稳定对于维持茶园土壤线虫群落的数量具有重要意义。
在本研究中, 拟丽突属作为该区域的绝对优势属, 和Zhang等[9]研究黑土区域的结果一致。这主要是因为表层土壤有机质丰富, 为其提供了良好的繁殖环境。自然选择的作用使该类群繁殖力增强, 通过提高某些线虫类群的线虫个体数量来替代一些在该环境中不易生存的线虫的作用, 从而维持整个土壤生态系统的稳定, 这与Walker[25]提出的“冗余种”假说一致。
3.2 土壤团聚体线虫营养类群结构土壤线虫营养类群反映了土壤线虫食物资源组成比例, 资源的有效性增加可以导致微生物数量的增加, 并进一步在土壤食物网内的更高营养级上反映出来, 符合资源影响食物网结构的“上行效应”趋势[21]。土壤团聚体的空间分布和形状大小不同, 从而导致不同粒径团聚体中水热条件存在差异, 进而影响团聚体中线虫营养类群的分布特征。在本研究中, 食细菌线虫、食真菌线虫和植食线虫数量的分布规律相似, 均是随着植茶年限的延长先升高后降低, 在植茶26年时数量较高, 且在>2 mm粒径团聚体中数量最多。这与土壤微生物在各植茶年限土壤团聚体的变化趋势基本一致[22]。此外, 由于食细菌线虫在该研究区域营养类群占据主导地位, 从而导致线虫总数在团聚体中的分布规律与食细菌线虫相似。可见, 土壤线虫的分布会因植茶阶段的不同而发生改变, 且分布存在临界年限。表明在茶园生态系统中, 植茶26年的土壤更有利于线虫总数和大部分营养类群的繁殖。由于土壤线虫的群落结构和食物资源的变化、有机物的分解途径及能量流动等生态过程密切相关[26]。因此, 植茶26年土壤食物网物质循环和能量流动周转速率可能较高。
食细菌线虫是土壤中最主要的自由生活线虫, 也是土壤线虫中优势的营养类群[27]。在农田生态系统中达60%以上, 在根际土壤的比例可达90%以上[28-29]。研究表明, 一条成熟的食细菌线虫每天大约可取食105—106个细菌来维持其生长[30]。在本研究中, 食细菌线虫占据主导优势且在植茶26年时最高。其根本原因是细菌为该区域的优势类群且植茶26年时细菌生物量相较于其他年限多。值得注意的是, 植茶26年时, 植食线虫数量也相对较高。一般认为, 植食线虫与植物根系生长情况有关[31]。植食线虫生存的场所主要是根际, 它们以新鲜细根为食物, 依赖根系生存。植茶26年时茶龄相对较短, 发达的幼根为植食线虫提供了更多的取食位点。这与Cepelle等[32]和Liu等[33]研究结果一致。杂食/捕食线虫是决定土壤食物网复杂性的关键生物类群[34]。而在本研究中, 其数量最少且在团聚体和年限变化间均未达到显著差异, 可能跟该类群营养类群c-p值高, 体型较大, 处于较高的营养级有关[35]。
3.3 土壤团聚体线虫群落生态指数Ferris等[20]在线虫功能团划分的基础上提出了线虫区系分析的方法用来反应土壤食物网结构、土壤养分富集状况和分解途径等信息。EI主要用于评估食物网对可利用资源的响应, EI数值越高, 表明食物资源丰富, 有机质的分解以细菌通道为主。SI主要用于评价食物网的长度及关联度。SI值越高, 表明食物网的长度越长, 关联度越复杂, 食物网越稳定。二者结合可以更好地指示土壤环境所受到的扰动和土壤食物网情况。本研究发现随着植茶年限的延长, >2 mm粒径团聚体中, 富集指数和结构指数逐渐降低且线虫区系分布从B象限向D象限方向靠拢。表明随着植茶年限的延长, 土壤食物资源减少, 食物网结构变得简单, 使得土壤养分富集状况变差, 食物网逐渐退化。而随着团聚体粒径的变化, 富集指数和结构指数在各植茶年限均有增加的趋势, 且25 mm粒径团聚体中逐渐向B象限靠拢, 这表明相较>0.25 mm粒径团聚体, 25 mm粒径团聚体食物资源丰富, 受到的干扰少, 食物网较稳定。由于土壤食物网的调控方式以自下而上为主, 自上而下为辅, 即作为土壤食物网能量来源的碎屑, 其数量和质量决定了食物网的结构和功能。因此, 土壤食物网管理主要通过连续不断的补充外源有机质, 来维持食物网的稳定[3]。故研究区在退耕植茶工程的实施过程中, 应在植茶后期注意对有机肥的合理配施, 保持茶园土壤的肥力和土壤食物网结构, 以实现茶园土壤的可持续利用。同时, 土地利用方式、耕作制度等土地管理措施的影响首先体现在大团聚体中, 故在植茶后期也应加强对土地管理等措施的改善, 尽量减少大粒径团聚体的人为干扰。
4 结论(1) 不同植茶年限土壤团聚体线虫群落以拟丽突属Acrobeloides为优势属, 线虫总数随植茶年限的延长呈先升高后降低的变化趋势, 植茶26年数量最高, 随粒径的减小而减少。随着植茶年限的延长, 线虫类群数在>2 mm粒径团聚体中响应不敏感;随着粒径的减小, 各植茶年限线虫类群数均减少。
(2) 不同植茶年限土壤团聚体线虫群落以食细菌线虫为主, 多数线虫营养类群数量均随植茶年限的延长呈先升高后降低的变化趋势, 在植茶26年数量最高, 且随粒径的减小而减少。表明植茶26年土壤更适合线虫繁殖且大粒径土壤团聚体更有利于线虫生存。
(3) 线虫区系分析表明, 随着植茶年限的延长, 土壤养分变差, 食物网退化;相较>0.25 mm粒径团聚体, 25 mm粒径团聚体受到的干扰少。
[1] |
Bongers T, Bongers M. Functional diversity of nematodes. Applied Soil Ecology, 1998, 10(3): 239-251. DOI:10.1016/S0929-1393(98)00123-1 |
[2] |
Neher D A. Role of Nematodes in Soil Health and Their Use as Indicators. Journal of Nematology, 2001, 33(4): 161-168. |
[3] |
陈云峰, 韩雪梅, 李钰飞, 胡诚. 线虫区系分析指示土壤食物网结构和功能研究进展. 生态学报, 2014, 34(5): 1072-1084. |
[4] |
Sánchez-Moreno S, Jiménez L, Alonso-Prados J L, García-Baudín J M. Nematodes as indicators of fumigant effects on soil food webs in strawberry crops in Southern Spain. Ecological Indicators, 2010, 10(2): 148-156. DOI:10.1016/j.ecolind.2009.04.010 |
[5] |
Thomasson A J, Jones F G W. Bulk Density as an indicator of pore space in soils usable by nematodes. Nematologica, 1976, 22(2): 133-137. DOI:10.1163/187529276X00201 |
[6] |
Jiang X, Wright A L, Wang J, Li Z. Long-term tillage effects on the distribution patterns of microbial biomass and activities within soil aggregates. CATENA, 2011, 87(2): 276-280. DOI:10.1016/j.catena.2011.06.011 |
[7] |
Briar S S, Fonte S J, Park I, Six J, Scow K, Ferris H. The distribution of nematodes and soil microbial communities across soil aggregate fractions and farm management systems. Soil Biology and Biochemistry, 2011, 43(5): 905-914. DOI:10.1016/j.soilbio.2010.12.017 |
[8] |
Zhang Z Y, Zhang X K, Mahamood M, Zhang S Q, Huang S M, Liang W J. Effect of long-term combined application of organic and inorganic fertilizers on soil nematode communities within aggregates. Scientific Reports, 2016, 6: 31118. DOI:10.1038/srep31118 |
[9] |
Zhang S X, Li Q, Lü Y, Zhang X P, Liang W J. Contributions of soil biota to C sequestration varied with aggregate fractions under different tillage systems. Soil Biology and Biochemistry, 2013, 62: 147-156. DOI:10.1016/j.soilbio.2013.03.023 |
[10] |
Jiang Y J, Sun B, Jin C, Wang F. Soil aggregate stratification of nematodes and microbial communities affects the metabolic quotient in an acid soil. Soil Biology and Biochemistry, 2013, 60: 1-9. DOI:10.1016/j.soilbio.2013.01.006 |
[11] |
Li W, Zheng Z C, Li T X, Zhang X Z, Wang Y D, Yu H Y, He S Q, Liu T. Effect of tea plantation age on the distribution of soil organic carbon fractions within water-stable aggregates in the hilly region of Western Sichuan, China. CATENA, 2015, 133: 198-205. DOI:10.1016/j.catena.2015.05.017 |
[12] |
Wang S Q, Li T X, Zheng Z C. Effect of tea plantation age on the distribution of soil organic carbon and nutrient within micro-aggregates in the hilly region of western Sichuan, China. Ecological Engineering, 2016, 90: 113-119. DOI:10.1016/j.ecoleng.2016.01.046 |
[13] |
Wang S Q, Li T X, Zheng Z C. Distribution of microbial biomass and activity within soil aggregates as affected by tea plantation age. CATENA, 2017, 153: 1-8. DOI:10.1016/j.catena.2017.01.029 |
[14] |
Gartzia-Bengoetxea N, González-Arias A, Merino A, de Arano I M. Soil organic matter in soil physical fractions in adjacent semi-natural and cultivated stands in temperate Atlantic forests. Soil Biology and Biochemistry, 2009, 41(8): 1674-1683. DOI:10.1016/j.soilbio.2009.05.010 |
[15] |
Zhang Z Y, Zhang X K, Jhao J S, Zhang X P, Liang W J. Tillage and rotation effects on community composition and metabolic footprints of soil nematodes in a black soil. European Journal of Soil Biology, 2015, 66: 40-48. DOI:10.1016/j.ejsobi.2014.11.006 |
[16] |
张晓珂, 梁文举, 李琪. 长白山森林土壤线虫. 北京:中国农业出版社, 2013. |
[17] |
吴纪华.中国淡水和土壤线虫的研究[D].武汉: 中国科学院水生生物研究所, 1999. http://ir.ihb.ac.cn/handle/342005/19793?mode=full&submit_simple=Show+full+item+record
|
[18] |
Goodey T. Soil and freshwater nematodes:a monograph. JAMA, 1951, 146(11): 1085-1086. |
[19] |
Yeates G W, Bongers T, De Goede R G, Freckman D W, Georgieva S S. Feeding habits in soil nematode families and genera-an outline for soil ecologists. Journal of Nematology, 1993, 25(3): 315-331. |
[20] |
Ferris H, Bongers T, de Goede R G M. A framework for soil food web diagnostics:extension of the nematode faunal analysis concept. Applied Soil Ecology, 2001, 18(1): 13-29. |
[21] |
刘雨迪, 陈小云, 刘满强, 秦红涛, 李辉信, 胡锋. 不同稻作年限下土壤微生物学性质和线虫群落特征的变化. 生物多样性, 2013, 21(3): 334-342. |
[22] |
Wang S Q, Li T X, Zheng Z C. Response of soil aggregate-associated microbial and nematode communities to tea plantation age. CATENA, 2018, 171: 475-484. DOI:10.1016/j.catena.2018.07.041 |
[23] |
Yeates G W. Diversity of nematode faunae under three vegetation types on a pallic soil in Otago, New Zealand. New Zealand Journal of Zoology, 1996, 23(4): 401-407. DOI:10.1080/03014223.1996.9518099 |
[24] |
Hassink J, Bouwman L A, Zwart K B, Brussaard L. Relationships between habitable pore space, soil biota and mineralization rates in grassland soils. Soil Biology and Biochemistry, 1993, 25(1): 47-55. DOI:10.1016/0038-0717(93)90240-C |
[25] |
Walker B H. Biodiversity and Ecological Redundancy. Conservation Biology, 1992, 6(1): 18-23. |
[26] |
潘凤娟, 韩晓增, 邹文秀. 春大豆长期连作对土壤线虫群落结构和食物网的影响. 大豆科学, 2017, 36(4): 606-613. |
[27] |
吴纪华, 宋慈玉, 陈家宽. 食微线虫对植物生长及土壤养分循环的影响. 生物多样性, 2007, 15(2): 124-133. DOI:10.3321/j.issn:1005-0094.2007.02.003 |
[28] |
Sohlenius B, Sandor A. Vertical distribution of nematodes in arable soil under grass (Festuca pratensis) and barley (Hordeum distichum). Biology and Fertility of Soils, 1987, 3(1/2): 19-25. |
[29] |
Bouwman L A, Bloem J, Van Den Boogert P H J F, Bremer F, Hoenderboom G H J, de Ruiter P C. Short-term and long-term effects of bacterivorous nematodes and nematophagous fungi on carbon and nitrogen mineralization in microcosms. Biology and Fertility of Soils, 1994, 17(4): 249-256. DOI:10.1007/BF00383977 |
[30] |
Ingham R E, Trofymow J A, Ingham E R, Coleman D C. Interactions of bacteria, fungi, and their nematode grazers:effects on nutrient cycling and plant growth. Ecological Monographs, 1985, 55(1): 119-140. DOI:10.2307/1942528 |
[31] |
陈利, 刘金梁, 谷加存, 王政权. 水曲柳和落叶松人工林土壤线虫密度的季节动态. 林业科学, 2011, 47(12): 69-77. DOI:10.11707/j.1001-7488.20111210 |
[32] |
van Capelle C, Schrader S, Brunotte J. Tillage-induced changes in the functional diversity of soil biota:A review with a focus on German data. European Journal of Soil Biology, 2012, 50: 165-181. DOI:10.1016/j.ejsobi.2012.02.005 |
[33] |
Liu M Q, Chen X Y, Qin J T, Wang D, Griffiths B, Hu F. A sequential extraction procedure reveals that water management affects soil nematode communities in paddy fields. Applied Soil Ecology, 2008, 40(2): 250-259. DOI:10.1016/j.apsoil.2008.05.001 |
[34] |
Polis G A, Strong D R. Food web complexity and community dynamics. American Naturalist, 1996, 147(5): 813-846. DOI:10.1086/285880 |
[35] |
Forge T A, Bittman S, Kowalenko C G. Responses of grassland soil nematodes and protozoa to multi-year and single-year applications of dairy manure slurry and fertilizer. Soil Biology and Biochemistry, 2005, 37(10): 1751-1762. DOI:10.1016/j.soilbio.2004.11.013 |