文章信息
- 丁柳丽, 邹定辉, 刘露, 邓亚运
- DING Liuli, ZOU Dinghui, LIU Lu, DENG Yayun
- 气候变化对海藻龙须菜生长与光合作用耐热特性的影响
- Effect of climate change on the growth and photosynthetic thermal tolerance in the marine macroalga Gracilaria lemaneiformis
- 生态学报, 2015, 35(10): 3267-3277
- Acta Ecologica Sinica, 2015, 35(10): 3267-3277
- http://dx.doi.org/10.5846/stxb201307061846
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文章历史
- 收稿日期:2013-07-06
- 网络出版日期:2014-05-30
2. 工业聚集区污染控制与生态修复教育部重点实验室, 广州 510006
2. The Key Laboratory of Pollution Control and Ecosystem Restoration in Industry Clusters, Ministry of Education, Guangzhou 510006, China
自然界中因植物光合作用和呼吸作用所引起的CO2交换量远大于因化石燃料燃烧所产生的CO2量[1]。因此,CO2浓度和温度对植物光合作用和呼吸作用的影响,在极大程度上影响着全球大气的变化。预计在21世纪末,CO2的浓度将上升到700 μL/L至1000 μL/L,其所引起的全球变暖将导致全球海洋表面平均温度上升1.0—4.4℃[2]。
大气中CO2浓度的上升将导致表层海水pH值下降0.3—0.4个单位,即海水中的H+将增加150%[3],这种海水的酸化将进一步导致海水无机碳系统(DIC)的改变。通常pH为8.2的天然海水中,DIC的3种形态HCO3-、CO32-和CO2所占比例分别约为90%、9%和1%。大气中CO2浓度的加倍将引起表层海中水溶性CO2加倍,而对HCO3-的影响则较小,其浓度仅从2.2 mmol/L增加到2.34 mmol/L[4]。CO2浓度升高对具有“生物泵”功能的大型海藻生理生化以及无机碳的利用都会产生影响[5]。大型海藻对高CO2浓度的响应很大程度上取决于其在天然海水系统中的无机碳受限程度[6]。大型海藻光合固碳作用因为海水中CO2溶解性和扩散速率较低、HCO3-自发脱水形成CO2的速率较低以及光合作用关键酶对CO2亲和力较低等因素而受到限制[7]。海藻在长期适应生境的过程中逐步调整无机碳的利用方式,使得大部分海藻都具有碳浓缩机制(CCM),具有直接或者间接利用海水中的HCO3-的能力,使得自然海水中的碳系统基本能满足海藻光合作用对碳的需求。海藻对无机碳利用机制的不同使得其对高CO2浓度的响应不同。此外,大气CO2浓度对海藻的影响还与生长在潮间带周期性干出和沉没的生境特点有关,光合作用所利用的无机碳形式在CO2和HCO3-之间转变,也影响大型海藻对大气CO2浓度升高的响应[5]。CO2浓度升高除了影响大型海藻光合生理特性外,还影响生化组分含量。已有研究表明,高CO2浓度培养使条浒苔的叶绿素含量及可溶性蛋白含量下降,而可溶性碳水化合物含量增加[8]。高CO2浓度还会导致光合作用关键酶——碳酸酐酶(CA)和核酮糖-1,5-二磷酸羧化酶(Rubisco)含量或活性下降[9]。CA酶活性下降影响了其催化HCO3-脱水形成CO2的速率,CA酶及Rubisco酶活性的下降将直接或间接影响光合碳固定速率,进而影响海藻光合特性。有研究发现,叶绿素a以及藻胆蛋白在高CO2浓度下也有所下降[10]。光合作用酶以及色素的下降影响着光合无机碳的利用以及光能的获取。
大气CO2浓度上升引起的温度变化也影响大型海藻生命活动。光合作用涉及到的一系列酶促反应以及作为光合作用反应场所的叶绿体膜完整性几乎都受温度的影响。Kübler等[11]早期研究表明,角叉菜对其生长温度的适应很大程度上决定了其耐热性能和热胁迫后的恢复能力。温度变化可导致光饱和光合作用电子传递或者碳代谢受抑制,从而影响海藻光合作用特性[12]。此外,随着温度的升高,Rubisco酶对O2的亲和力逐渐增加并高于其对CO2的亲和力,从而导致光呼吸作用增加,这种高温引起的光呼吸作用增强也会影响饱和光合作用速率。虽然原初光化学反应不受温度的影响,但是光反应阶段的电子传递和光合磷酸化过程以及质体醌的扩散等与温度密切相关,因此温度会影响光能捕获效率或者光能利用效率[12]。
目前由于全球气候变暖导致海洋表层平均温度升高,同时大气CO2浓度升高也使得表层海水酸化,这些显著影响了海藻生长和栽培的生态环境条件。龙须菜作为广泛分布在中国南方及北方海域的重要大型经济海藻之一,其生长及光合作用对温度的耐受性是龙须菜应对温室效应的重要影响因素。有研究表明龙须菜利用无机碳的方式主要是:HCO3-通过胞外CA酶催化脱氢形成CO2,再扩散进入细胞内被Rubisco酶固定[13]。目前已有关于大气CO2和温度耦联对几种微藻[14, 15]生理生化特性的研究,而对龙须菜生长和光合及生化特性在大气CO2升高背景下的研究也考虑到了其他环境因素的共同影响,如光强[16]、氮营养盐[17]等,然而关于CO2和温度对龙须菜共同作用的研究则相对较少。在大气CO2浓度加倍以及温度上升4—5℃的温室效应背景下,本实验以正常条件(390 μL/L + 20℃)下生长的龙须菜为对照组,将CO2升高(700 μL/L + 20℃)、温度升高(390 μL/L + 24℃)以及温室效应(700 μL/L + 24℃)下生长的龙须菜与对照组进行比较,探讨以下3个问题:1)不同CO2浓度和温度生长条件对龙须菜的生长和生化含量的影响;2)CO2浓度和温度对龙须菜生理生化特性的影响是否存在相互作用;3)不同CO2浓度和温度生长是否会影响龙须菜光合作用及生理特性对短时高温的耐受性。
1 材料及方法 1.1 龙须菜采集及暂养龙须菜生长期为每年的1—6月,于2012年5月采自汕头南澳岛,此时汕头海域水温约为20℃。低潮时从潮间带采集健康无损的龙须菜,用装有少量海水的保温箱将藻体控制在低温并在最短时间内运至实验室。藻体在温度20℃和光照强度150—200 μmol m-2 s-1条件下进行持续通气暂养,光照周期为L∶D=12 h∶12 h(光照时间为9:00至21:00)。培养海水为过滤的天然海水,盐度为32,添加一定浓度的NaNO3和NaH2PO4并使其终浓度分别为200 μmol/L和25 μmol/L。暂养3 d后进行实验。
1.2 实验处理及测定方法准备12个装有5 L天然过滤海水的三角瓶来培养龙须菜,每个三角烧瓶中加入6.15 g(± 0.04 g)龙须菜。将2个植物培养箱CO2浓度设定为700 μL/L,温度分别设定为20℃和24℃两个温度,每个温度下放置6个重复样,向其中3个平行样通入正常空气(通过气泵从外界泵入空气流通良好区域的空气,CO2浓度约为390 μL/L),向另外3个平行样通入高CO2浓度空气(通过气泵从培养箱内泵入高CO2浓度的空气,CO2浓度约为700 μL/L)。其他条件与暂养条件一致。综上所述,实验中龙须菜的4种培养条件分别为:1)对照组或CK组(390 μL/L + 20℃);2)CO2升高组(700 μL/L + 20℃);3)温度升高组(390 μL/L + 24℃);4)温室效应组(700 μL/L + 24℃)。培养10 d后进行相关生理生化特性测定及温度胁迫实验。
1.2.1 生长和生化组分培养期间,每两天更换海水时测定龙须菜鲜重(FW, g),称量前用吸水纸吸干藻体表面水分,通过相对生长速率(RGR,% d-1)来衡量藻体生长趋势,计算公式为 ,式中M0为初始鲜重,Mt为培养t天后的藻体鲜重。
可溶性蛋白(SP)含量的测定采用考马斯亮蓝G-250染料结合法[18]。利用苯酚-硫酸法测定可溶性碳水化合物(SC)含量[19]。参照Beer和Eshel[20]的方法测定藻红蛋白(PE)和藻蓝蛋白(PC) 含量。根据Jensen[21],采用丙酮提取法测定叶绿素(Chl a)和类胡萝卜素(Car)的含量。
1.2.2 高温胁迫对叶绿素荧光参数的影响培养结束后,将不同条件下生长的龙须菜进行短期高温(32、36℃和40℃)胁迫处理,并测定其叶绿素荧光参数随时间的变化。从4种培养条件下生长的龙须菜中各自选出6枝生长状态一致的藻体,放入预先准备好的4个三角烧瓶内进行胁迫处理(用光照培养箱将4个装有1 L过滤天然海水的三角烧瓶的温度控制在胁迫温度,实验前海水至少通气12 h以保证海水中无机碳系统达到平衡),务必使龙须菜在胁迫处理时的通气条件与其培养时的通气条件保持一致。在高温32℃和36℃胁迫0、0.5、1、3 h和6 h时和高温40℃胁迫的0 h、5 min、10 min、20 min和30 min时测定龙须菜叶绿素荧光参数。
利用调制叶绿素荧光仪Junior-PAM(Walz,German)测定叶绿素荧光参数。向藻体连续照射8个光强梯度的光化光(66—820 μmol m-2 s-1),照射间隔为10 s,得到快速光曲线。光系统Ⅱ(PSⅡ)的最大光化学量子产量Fv/Fm可通过公式计算[22]:Fv/Fm=(Fm-Fo)/Fm,其中Fm为最大荧光值,Fo为最小荧光值;对快速光曲线的非线性曲线拟合可得光能利用效率α,拟合公式[23]为:rETR= rETRmax·tanh(α·PPFD/rETRmax),式中:rETR为相对电子传递速率;rETRmax为相对最大电子传递速率;PPFD为光量子通量密度。
1.2.3 高温胁迫对呼吸速率和光合放氧速率的影响高温胁迫处理方法与1.2.2相同,分别在高温32℃和36℃胁迫的0、1、3 h和6 h时以及高温40℃胁迫的0 、10、20 min和30 min时测定各条件下生长的龙须菜呼吸速率(黑暗状态)和光合放氧速率(饱和光强400 μmol m-2 s-1)。
呼吸速率和光合放氧速率采用氧电极测定(YSI-5300,USA)。将龙须菜剪成0.8 cm左右的小段,放在原生长条件下至少恢复1 h。称取约0.15 g鲜重藻样,放入装有8 mL反应介质的反应槽中,利用循环水浴使反应槽的温度与胁迫温度保持一致。黑暗状态利用不透光塑料膜遮盖反应槽所得,饱和光强通过光量子计测定来调节光源与反应槽间距离而得。测定过程中用转子不断搅拌反应介质,每次测定在5 min至10 min内完成。
1.3 统计与分析采用Origin 8.0软件绘制图形,利用SPSS软件进行t-检验或单因子方差分析鉴定数据差异性,设P < 0.05为显著性差异水平。
2 结果 2.1 生长和生化组分含量如图 1所示,各组龙须菜FW随时间的变化呈上升趋势。CO2升高组、温度升高组以及温室效应组龙须菜FW和RGR均大于对照组。温室效应组龙须菜RGR显著高于其他条件下的龙须菜(P < 0.05)(图 1)。
各组龙须菜生化含量差异如表 1所示。与CK组相比,CO2升高组SC含量明显下降(P < 0.05),而其他生化指标基本不受影响;温度升高组龙须菜SP和SC含量明显下降。温室效应组龙须菜SP和SC含量明显下降(P < 0.05)。温度升高组和温室效应组Chl a和Car含量均上升,而这两种色素含量在两组龙须菜之间未表现出显著差异(P > 0.05)。PE和PC基本不受CO2和温度的影响(表 1)。
项目 Items | CK组 Control(390 μL/L + 20℃) | CO2升高组 Elevated CO2(700 μL/L + 20℃) | 温度升高组 Elevated temperature(390 μL/L + 24℃) | 温室效应组 Greenhouse effect(700 μL/L + 24℃) |
* SP全称为Solution Protein; SC全称为Soluble Carbohydrate; PE全称为Phycoerythrin; PC全称为Phycocyanin | ||||
可溶性蛋白质SP*/(mg/g FW) | 10.4±0.8 | 10.7±0.5 | 10.1±0.5 | 8.7±1.2 |
可溶性碳水化合物SC* /(mg/g FW) | 22.3±0.5 | 16.7±1.0 | 18.1±2.6 | 15.7±2.8 |
叶绿素a Chl a/(mg/g FW) | 0.22±0.01 | 0.22±0.01 | 0.24±0.01 | 0.24±0.01 |
类胡萝卜素 Car/(mg/g FW) | 0.084±0.004 | 0.087±0.004 | 0.098±0.002 | 0.098±0.002 |
藻红蛋白 PE* /(mg/g FW) | 0.67±0.03 | 0.61±0.06 | 0.67±0.14 | 0.77±0.03 |
藻蓝蛋白PC* /(mg/g FW) | 0.12±0.02 | 0.1±0.02 | 0.12±0.03 | 0.11±0.02 |
图 2所示为不同条件下生长的龙须菜Fv/Fm、α值在高温32℃胁迫时随时间的变化。随胁迫时间的延长,各组龙须菜Fv/Fm值下降率均不超过10%(图 2)。α值呈上升趋势,其中CK组龙须菜α值上升了43.0%,温度升高组或者CO2升高组龙须菜的α值随高温32℃处理时间变化的影响程度均不超过25%,而温室效应组龙须菜的α值在受高温32℃胁迫后上升了116.4%(图 2)。整个处理过程中,各组龙须菜的Fv/Fm和α值未表现出显著差异(P > 0.05)。
图 3为各条件下生长的龙须菜Fv/Fm和α受36℃胁迫时随时间的变化趋势。高温36℃胁迫使各组龙须菜Fv/Fm值明显下降,其中CK组和CO2升高组分别下降了77.7%和71.2%,而温度升高组和温室效应组则下降了不到25%(下降率分别为24.9%和21.8%)(图 3)。各组龙须菜的α值变化趋势与Fv/Fm值一致,其中CK组和CO2升高组龙须菜α值下降了75%以上,而温度升高组和温室效应组则分别下降了26.0%和7.8%(图 3)。整个胁迫过程中,温度升高组以及温室效应组龙须菜Fv/Fm和α值显著高于CK组和CO2升高组(P < 0.05)。可见,高温(24℃)的生长条件使龙须菜光合参数在高温36℃胁迫下较稳定。
高温40℃胁迫对不同生长条件下的龙须菜Fv/Fm和α值的影响如图 4所示。各组龙须菜Fv/Fm值(图 4)和α值(图 4)的差异不显著(P > 0.05),在胁迫处理5 min后均急剧下降到极低值。
2.3 光合作用和呼吸作用高温忍耐特性图 5所示为不同生长条件下的龙须菜呼吸作用随着高温胁迫处理时间延长的变化。32℃胁迫6 h使各组龙须菜Rd呈上升趋势,其中CK组、CO2升高组、温度升高组和温室效应组分别上升了11.23%、22.55%、14.27%和17.1%。整个过程中,温度升高组龙须菜Rd显著低于其他组龙须菜(P < 0.05)。36℃胁迫6 h后,CK组和温室效应组龙须菜Rd基本不变,温度升高组和CO2升高组龙须菜Rd分别下降了7.95%和15.67%。40℃胁迫30 min后,龙须菜Rd均呈下降趋势,其中CK组龙须菜Rd下降率最大(下降了30.42%),温度升高组和温室效应组龙须菜Rd显著低于对照组(P < 0.05)(图 5)。
图 6为不同生长条件下的龙须菜光合放氧速率随着高温胁迫处理时间的变化。32℃胁迫6 h,各组龙须菜Pn呈上升趋势,其中CK组龙须菜Pn上升幅度最大,高达40.72%。整个处理过程中,温度升高组和温室效应组龙须菜Pn显著大于CK组龙须菜(P < 0.05)。36℃胁迫6 h后,各组龙须菜Pn下降,其中温室效应组龙须菜Pn显著高于其他组(P < 0.05)。40℃胁迫10 min后,龙须菜Pn均下降到零,而此时呼吸作用维持相对较高的水平(图 6)。
如图 7,温度升高组或者CO2升高组龙须菜Rd与CK组未表现出显著差异(P > 0.05),而温室效应组龙须菜Rd显著高于CK组和CO2升高组(P < 0.05)。温度升高组龙须菜Pn与CK组无之间无显著差异,CO2升高组和温室效应组龙须菜Pn显著高于CK组(P < 0.05)。温度升高组Rd和Pn与CK组无显著差异,CO2升高组具有较低的Rd和较高的Pn,温室效应组则表现出较高的Rd和Pn(图 7)。
3 讨论本实验结果表明CO2升高或者温度升高以及温室效应均能促进龙须菜的生长,但温室效应的促进作用更显著,表明高CO2浓度对龙须菜生长的影响可能与温度有关。这与Zou等[16]关于高CO2浓度和光强对龙须菜生长的影响结果类似,高CO2浓度对高光强下生长的龙须菜具有明显的促进作用。大部分海藻具有碳浓缩机制,在光合作用过程中,海藻通过胞外CA酶催化HCO3-脱水产生的OH-的速率大于CO2向海水形成H+的速率,会引起海水pH值上升。因此,本实验中出现这种现象,可能是海水pH值的上升导致温度升高条件下生长的龙须菜光合作用对无机碳的亲和力下降从而受到碳代谢的限制[13],而不断向海水中通入高CO2浓度空气使得海水中无机碳浓度增加,解除了碳限制,增强其光合作用,进而促进了龙须菜生长。
通常情况下,高CO2浓度培养使海藻可溶性蛋白含量下降,而可溶性碳水化合物含量增加[8]。本实验中,温室效应组龙须菜SP和SC含量均下降,这与该组龙须菜所表现出的较高RGR、Rd和Pn的现象一致。光合固碳和生长的加速使龙须菜对N的需求量更高,藻体内可溶性蛋白含量下降可能是因为可溶性蛋白被作为生长所需氮源而导致[24]。此外,呼吸作用的增强消耗了大量的糖类等能源物质,因此温室效应组龙须菜SC含量也下降。本实验结果还表明Chl a和Car含量不受CO2浓度的影响,温度升高使龙须菜Chl a和Car含量上升。这与Zou等[16]关于龙须菜Chl a含量不受CO2水平影响而受光照水平的影响的结果一致。Chl a和Car含量的增加为光合作用提供更多的光能,此外,Car的增加增强了保护光合膜的功能[25]。Zou等[16]发现龙须菜PE和PC含量受CO2浓度和光照强度的影响,而本实验结果表明,龙须菜PE和PC不受CO2和温度的影响。
叶绿素荧光对热胁迫的感应非常灵敏,当外界温度变化时,植物通过迅速改变PSⅡ反应中心开合状态使植物快速适应外界温度变化[1]。本实验中,龙须菜Fv/Fm和α值在32℃高温胁迫6 h后并无下降趋势,在36℃高温胁迫6 h后表现出不同程度的下降,而在40℃胁迫20 min后均下降到极低。这表明龙须菜在6 h高温32℃条件下并未受到胁迫,其潜在的最大光能转换效率以及光能利用效率未受到影响;在高温36℃处理时受到不同程度的胁迫,不同条件下生长的龙须菜最大光能转换效率以及光能利用效率下降程度不同;龙须菜在高温40℃处理时遭到严重胁迫,最大光能转换效率以及光能利用效率在短时间下降到极低值,PSⅡ反应中心受损严重。类似的结果在Ralph[26]对高等植物Halophila ovalis的研究也有发现,该植物在25—30℃内未受到胁迫影响,对超出该范围外的其他温度较敏感,高温40℃处理5 h使得Fv/Fm下降了一半且PSⅡ受到不可修复的损伤。此外,正常温度生长(20℃,包括对照组和CO2升高组)与高温生长的龙须菜(24℃,包括温度升高组和温室效应组)Fv/Fm和α值在36℃高温胁迫下表现出明显差异,前者Fv/Fm和α值下降了70%以上,而后者下降率不超过26%,表明正常温度(20℃)生长的龙须菜最高耐受温度限度可能在32—36℃之间,而高温(24℃)生长的龙须菜可能在36—40℃之间,进一步证明了低温生长的植物对高温胁迫的耐受力相对于高温生长的植物会下降[12, 27]。本实验中不同温度生长下的龙须菜在热胁迫下所表现出的叶绿素荧光参数敏感性的差异可能是龙须菜对各自生长温度的长期适应所引起,对温度的长期适应可能涉及到类囊体膜重组、热激蛋白和脂类以及内源蛋白的合成等生理过程[28]。此外,CO2升高与对照组龙须菜叶绿素荧光参数在高温胁迫过程中的差异不显著。可见,生长温度比CO2浓度对龙须菜抗高温逆境胁迫能力的影响更大。
光合作用和呼吸作用是影响植物碳代谢及生物量的两个重要生理过程。本实验中,温室效应组龙须菜Rd显著高于CO2升高组,而对照组和温度升高组之间的差异不显著,即CO2浓度升高只有在高温生长条件下才对龙须菜呼吸作用表现出显著影响,表明CO2对龙须菜Rd的影响可能与温度有关。温室效应组和温度升高组龙须菜Pn显著高于其他两组,表明温度对龙须菜光合作用的影响更显著。有研究表明,CO2浓度升高可通过增加光合固碳底物浓度和优化光系统结构来促进植物光合作用[29],该实验中CO2升高并未对龙须菜光合作用产生显著促进作用,可能是龙须菜所具有的CCM机制以及其光系统结构并没有发生太大的变化所致。高温32℃下,龙须菜Rd和Pn均随时间的延长而上升;高温36℃下,各组龙须菜Rd和Pn表现出不同程度的下降;高温40℃胁迫时,所有Rd和Pn均急剧下降。这与叶绿素荧光参数的变化趋势一致。Luo等[30]关于葡萄藤研究表明,35℃高温不足以对葡萄藤光合作用产生影响,而40℃胁迫引起的葡萄藤光合作用下降主要与 Rubisco酶活性提高以及PSⅡ反应中心和受体侧活性受抑制这三方面的因素有关。一般植物的光合作用都有其最适温度,超出这个温度范围,光合产量将逐步减少最终导致CO2吸收的终止。植物在短期热胁迫下,PSⅡ中水裂解反应受阻,最大光化学量子产量和来自PSⅡ电子受体的电子流减少,从而引起PSⅡ反应中心关闭,发生光合作用下调现象,这是对短期温度变化的有效适应方式。对几小时短期热胁迫的适应可能涉及到热保护化合物的积累、类囊体pH值梯度的改变以及因淬灭机制改变所导致的下调等过程。红藻光系统受热胁迫时,按各器官对热胁敏感程度的高低,会先后发生放氧复合体活性下降、捕光色素复合体解离、藻胆体内部结构改变以及PSⅡ受体侧活性受抑制等现象[31]。本实验中,胁迫温度的高低和时间长短影响着光系统受损的状态,进而影响光合作用和呼吸作用。高温胁迫使得Rubisco酶及Calvin循环酶等活性发生变化,光合膜系统结构因脂肪酸饱和程度的变化而改变,胁迫温度越高对酶以及膜结构损伤越严重并伴随着相关生理功能的丧失[1]。在高温胁迫光合作用的早期,主要涉及到叶绿体膜特性的变化和能量转移机制的解偶联等[1],当胁迫温度足够高时,胁迫时间越长终将导致蛋白质的变性和细胞功能的完全丧失。
此外,高温(24℃)生长的龙须菜(温度升高组和温室效应组)在高温32℃胁迫下表现出较高的光合作用速率,其中温度升高组龙须菜在整个过程中呼吸作用显著低于其他组,温室效应组呼吸作用在胁迫3 h后也逐渐低于其他两组龙须菜,说明高温生长条件下的龙须菜具有较好的高温耐受性和碳代谢状态。Zou等[32]研究表明,低温生长的羊栖菜幼苗在其生长温度下的光合速率高于高温生长的羊栖菜在低温下的光合速率,这种大型海藻光合作用对温度的适应性与高等植物具有相同的机制,对低温的适应涉及到光合作用限制酶(如Rubico酶)含量或者活性增加,对高温的适应与光合作用器官的热稳定增强有关[32, 33]。高温36℃胁迫时,对照组和温室效应组龙须菜Rd基本不受温度胁迫影响,温室效应组龙须菜Pn显著高于其他3种,说明温室效应使其在受36℃高温胁迫时保持较好的碳代谢状态,即高CO2和高温生长条件共同提高了龙须菜光合作用和呼吸作用的耐热性能。温度升高组和CO2升高组龙须菜Rd在36℃胁迫时虽有所下降,但整个胁迫过程Rd值与其他两组并未表现出显著差异,温度升高组Pn在胁迫过程中与对照组无显著差异,而CO2升高组Pn显著低于对照组。这些说明CO2升高使得龙须菜光合作用和呼吸作用的高温耐受性下降,而温度升高的生长条件对其并未产生负面影响。彭长连等[34]研究也表明,高CO2浓度的生长环境对水稻叶片短期高温胁迫耐受能力未产生积极影响。
综上所述,CO2浓度或温度升高提高了龙须菜的生长速率,而温室效应更促进了龙须菜的生长;但温室效应降低了龙须菜SP和SC含量,温度升高使Chl a和Car上升,而CO2对两种色素无显著影响;CO2和温度对PE和PC均无影响。对生长温度的适应使得龙须菜具有不同的最高耐受温度限度,其中正常温度(20℃)生长的龙须菜可能在32—36℃之间,而高温(24℃)生长的龙须菜可能在36—40℃之间。生长温度对光合作用和呼吸作用耐热性能的影响比CO2浓度的影响更大,而温室效应更显著的提高了龙须菜光合作用的耐热性能。在温室效应背景下,龙须菜作为在海藻栽培最大重要地位的大型海藻之一,其生长加速以及光合固碳能力的增强,在全球碳循环和减缓未来大气CO2浓度上具有非常重要的意义。
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