2015, Vol. 35文章信息
- 夏海威, 施国新, 黄敏, 吴娟
- XIA Haiwei, SHI Guoxin, HUANG Min, WU Juan
- 一氧化氮对植物重金属胁迫抗性的影响研究进展
- Advances on effects of nitric oxide on resistances of plants to heavy metal stress
- 生态学报, 2015, 35(10): 3139-3147
- Acta Ecologica Sinica, 2015, 35(10): 3139-3147
- http://dx.doi.org/10.5846/stxb201306241770
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文章历史
- 收稿日期：2013-06-24
- 网络出版日期：2014-05-30
一氧化氮(Nitric Oxide,NO)是一种广泛存在于生物体内的水溶性和脂溶性气体小分子信号物质，在植物体内参与多种生理过程，如诱导种子萌发[1]、抑制种子休眠[2],调节植物光合作用[3]、花的形成[4]以及植物的根向地性生长[5]，延缓植物的衰老过程[6]等。同时，NO也参与调节植物对一系列非生物和生物胁迫的抗性，在非生物胁迫抗性方面，NO能够增强植物抗盐性，抗旱性，抗涝性，抗极端温度，抗紫外线辐等[7]；在生物胁迫抗性方面，NO能通过增加3′5′-环-磷酸鸟苷(cGMP)和水杨酸(SA)的水平来增强植物的抗病性[8]。
对重金属胁迫抗性而言，已有大量文献表明NO能够调节植物对重金属胁迫抗性，但对NO在植物重金属胁迫抗性方面的具体机制做系统总结和概括的研究较少并且对内源NO在调节植物重金属胁迫抗性上的功能角色也很少涉及。本文结合国内外最新的研究进展，综述了NO调节植物重金属胁迫抗性的相关机制，为研究植物重金属胁迫抗性机制提供了参考。
1 植物体内NO的产生途径 1.1 酶促反应途径 1.1.1 一氧化氮合酶(NOS)途径在动物体内，NO主要通过NOS以L-精氨酸、O2及NADPH为底物催化而成，FAD、FMN、血红素、四氢叶酸、Ca2+/CaM和Zn2+为NOS的辅基[9]。在植物体内也有类似的NOS，Neill等[7]发现植物能够通过氧化L-精氨酸形成瓜氨酸而产生NO，并且动物NOS抑制剂L-硝基精氨酸甲酯(L-NAME)能够抑制拟南芥NOS活性并减少NO的产生[10]，另外人们已经在植物组织如豌豆的根、茎、叶中[11]以及各种细胞器如过氧化物酶体[12]和叶绿体[13]中都检测到了NOS活性。然而植物NOS的基因和蛋白序列与动物却并不相同，如最近发现的绿藻(Ostreococcus tauri)中的NOS蛋白序列已经被鉴定出来，结果其与动物的NOS蛋白序列仅有45%的相似性，而其结构模型与动物的反应区域却高等相似[14]，另外Guo等发现拟南芥中AtNOS1基因编码的蛋白与蜗牛中参与NO合成的蛋白有相似序列，但这一蛋白与典型的动物NOS蛋白序列没有相似性[15]，并且体外重组的AtNOS1也没有NOS活性[16]，实际上AtNOS1是一种GTPase而不是NOS，因而命名为AtNOA1[17]，该蛋白可能参与线粒体核糖体的生物合成以及翻译过程，并在此过程中间接参与NO的合成[16]。
1.1.2 硝酸还原酶(NR)和亚硝酸还原酶(Ni-NOR)途径在植物体内除了NOS途径以外，细胞质的硝酸还原酶(NR)和根部特有的质膜亚硝酸还原酶(Ni-NOR)也参与NO的生成，NR和Ni-NOR以NAD(P)H作为电子供体进行还原反应将亚硝酸盐(NO-2)还原生成NO。已经在多种植物体内检测到了NR的活性，如黄瓜[18]、向日葵、菠菜和玉米[19]等。Sthr等在烟草根系中证实了Ni-NOR途径的存在[20]。
1.1.3 其他酶促途径另外，植物体内还有其他的酶也参与NO的产生，如辣根过氧化物酶[21]、黄嘌呤氧化酶(XOR)以及黄嘌呤脱氢酶(XDH)[22]、细胞色素P450[23]等。
1.2 非酶促途径植物体内还可通过非酶促反应途径合成 NO，如类胡萝卜素和光可以催化NO-2转化成NO[24]，另外在酸性或者还原条件下，质外体能够通过非酶促反应将亚硝酸盐还原为NO[25]。另外，研究发现多胺也能够诱导NO的产生[26]。
2 重金属胁迫下植物体内内源NO含量的变化重金属胁迫下，植物细胞内源NO含量往往会发生显著变化，然而内源NO含量的变化却有众多的影响因素。
如100 μmol/L的铜(Cu)、镉(Cd)、锌(Zn)短期处理24 h以后，豌豆根内的内源NO含量升高[27]，而100 μmol/L的Cu、Cd、Zn长期处理14 d以后，豌豆根内的内源NO含量却下降[28]，说明重金属处理时间的长短能够影响植物体内内源NO含量的变化。
Leterier等用不同浓度的砷(As)对拟南芥处理7 d以后发现，当砷浓度小于250 μmol/L时，拟南芥根内的NO含量没有增加，甚至在250 μmol/L时出现了下降；而当砷浓度超过500 μmol/L时，拟南芥根内的NO含量大幅增加，并且在500 μmol/L时达到最大[29]，表明植物体内内源NO含量的变化与重金属的浓度有关。
100μmol/L的Cd处理24 h以后，水稻根内的NO含量下降[30]，而在同样的100 μmol/L的Cd处理24 h以后豌豆根内的NO却增加[27]；另外，Chen等在研究大麦的两种基因型weishuobuzhi和dong17对5 μmol/L的Cd胁迫反应时发现，两种基因型大麦体内的NO含量变化不同，其中weishuobuzhi型大麦根内的NO含量在第1天达到最大值，而后随着处理时间的延长，NO含量迅速下降，而对Cd敏感的dong17型大麦根内的NO含量在第10天达到最大，另外，weishuobuzhi和dong17叶内的NO含量都在第1天达到最大[31]。这些发现说明重金属胁迫下，植物体内内源NO含量的变化与植物的种类以及基因型和植物组织类型有关。
尽管大量研究证明植物在重金属胁迫下内源NO含量的变化受植物种类与基因型，重金属浓度以及处理时间等因素的影响，然而对植物悬浮细胞而言，重金属胁迫下其内源NO含量总会增加[32, 33, 34, 35]，出现这一现象的原因可能是植物悬浮细胞缺少细胞与细胞之间的网络调控。
3 外源NO增强植物对重金属胁迫的抗性 3.1 外源NO缓解重金属对植物细胞造成的氧化胁迫活性氧(ROS)包括单线态氧(1O2)、超氧阴离子(O2·-)、过氧化氢(H2O2)、羟自由基( · OH)等。在正常生长过程中，植物细胞会产生ROS参与生理代谢，如光合作用和呼吸作用[36]。然而在包括重金属胁迫在内的胁迫条件下，植物细胞会产生过量的ROS，造成氧化胁迫，从而导致膜脂过氧化，蛋白质变性以及DNA和RNA的损伤等[37, 38, 39]。植物细胞内有一系列的抗氧化系统能够有效地清除ROS，抗氧化系统包括抗氧化酶，如超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化物酶(POD)、过氧化氢酶(CAT)、抗坏血酸过氧化物酶(APX)、谷胱甘肽过氧化物酶(GPX)以及谷胱甘肽还原酶(GR)等，还包括抗氧化剂小分子如抗坏血酸(ASA)、谷胱甘肽(GSH)、脯氨酸(Pro)和类胡萝素(Car)等[40]，近年来研究发现多胺(PAs)也属于抗氧化剂，能够有效地清除ROS[41]。
一方面外源NO能够提高植物细胞抗氧化系统，增强其清除ROS的能力，从而缓解重金属对植物细胞造成的氧化伤害。外源NO能够增强大豆悬浮细胞的抗氧化酶特别是SOD的活性，抑制Cd诱导产生的O2·-和H2O2的过量积累[32]；增强番茄SOD、CAT 和POD的活性，减少过量Cu诱导的氧化胁迫[42]；增加水稻抗氧化酶CAT、GR、POD和SOD的活性，并抑制Cd诱导的ASA和GSH含量的升高，从而增强水稻对Cd胁迫的抗性[43]；增加向日葵叶内的SOD、CAT、APX、GPX和GR活性以及GSH含量，缓解Cd对向日葵造成的氧化胁迫[44]；提高CAT、APX和GPX的活性以及Pro含量，抑制镍(Ni)对油菜的氧化胁迫[45]；提高人参根部抗氧化酶SOD、CAT、POD、APX和GR活性，缓解过量Cu造成的O2·-和H2O2积累以及膜脂过氧化，并大幅降低细胞死亡率[46]。Xu等发现在Cd胁迫下，苜蓿根内的GSH和Pro含量都下降，而外源NO处理能够显著增加Pro和GSH的含量并抑制Cd诱导的苜蓿根细胞K+和Ca2+的损失，缓解Cd对苜蓿造成的氧化损伤[47]。研究还发现外源NO能够通过调节苜蓿PAs代谢酶以及Pro代谢酶活性增加PAs和Pro含量[48]，增加Cd胁迫下小麦体内亚精胺(Spd)和精胺(Spm)的含量[49]，并且增强吡咯啉-5-羧酸合成酶(P5CS)的活性，增加Cu胁迫下衣藻对Pro的合成[50]。由此可见，外源NO能够增强植物体内的抗氧化系统，从而显著降低重金属对植物的毒害，增强植物对重金属胁迫的抗性。
另一方面，NO能够直接清除ROS，显著抑制重金属诱导的ROS的积累，从而缓解重金属对植物造成的氧化损伤。如外源NO能够减少Cd诱导的H2O2和膜脂过氧化产物丙二醛(MDA)的积累，缓解Cd对小麦根部造成的氧化胁迫，并阻止Cd诱导的抗氧化酶SOD、CAT、GPX和GR等活性的升高[51]；能够抑制As诱导水稻体内的O2·-、H2O2和MDA的积累以及抗氧化酶SOD、CAT、APX和GPX活性的升高[52]；能够逆转锰(Mn)胁迫诱导水稻体内GSH和ASA含量的下降以及抗氧化酶SOD、CAT、APX、GPX和GR活性的升高，并减少Mn诱导的H2O2的积累和反应膜脂过氧化程度的硫代巴比妥酸反应物(TBARS)水平的升高[53]；还能够逆转Cd诱导水稻的抗氧化酶SOD、CAT、APX、GPX和GR活性的升高以及ASA和GSH含量的下降，并抑制H2O2的积累，叶绿素和蛋白质的降解，缓解Cd对水稻的氧化胁迫[54]。以上发现说明外源NO能够直接降低重金属诱导的ROS的积累，原因可能是NO能够直接与O2·-结合形成过氧化亚硝酸盐(ONOO-)[55]，而ONOO-对动物细胞有极大毒性但对植物细胞代谢并不具有毒害作用[56]，并且ONOO-又能够与H2O2相互作用产生NO-2和O2[57]，因此NO能够与ROS直接结合，从而减少重金属诱导的ROS造成的细胞毒性。另外，重金属胁迫下植物体内的抗氧化系统的能力大幅提高是因为重金属胁迫诱导产生了大量的ROS，而ROS能够显著激活抗氧化酶活性[58]，因此外源NO显著降低抗氧化系统能力的原因可能是NO能够直接清除ROS，使ROS水平大幅降低，从而抑制了抗氧化系统能力的升高。
金属硫蛋白(Metallothioneins,MTs)是一种小分子的富含半胱氨酸的金属结合蛋白，通过巯基与重金属结合形成无毒或低毒络合物，从而避免有害重金属对植物体的潜在毒性[59]。在动物细胞中，有研究发现在肝细胞中添加NO的供体V-PYRRO/NO，能够大幅增强MTs基因的表达，从而减弱Cd的毒性，增强肝细胞对Cd胁迫的抗性[60]。原因可能是NO能够替换与MTs结合的重金属[61, 62]，并且释放的重金属能够进一步促进MTs基因的表达[62]。在植物细胞中可能也存在类似的机制，Wang等研究发现外源NO能够提高MTs的含量并增强番茄对Cu胁迫的抗性，而对MTs敏感型番茄而言，外源NO并不能明显地增强番茄对Cu胁迫的抗性，表明MTs在介导NO缓解重金属胁迫上起着至关重要的作用[42]。
3.2 外源NO影响植物对重金属的吸收以及重金属在植物体内的分布研究发现外源NO能够影响植物对重金属的吸收，从而调节植物对重金属胁迫的抗性。如外源NO能够减少苜蓿对Cd的吸收[47]，减少小麦和豌豆对Zn的过量积累[63]，抑制决明对铝(Al)的吸收[64]。但也有研究表明外源NO缓解重金属胁迫并不是通过抑制植物对重金属的吸收。如外源NO缓解过量Cu对小麦种子萌发的抑制作用，并且通过增强SOD和CAT的活性缓解过量Cu对小麦种子造成的氧化胁迫，然而外源NO并不能抑制小麦种子对Cu的吸收[65]；外源NO能够缓解过量Cu对人参造成的毒害作用，但并不能显著降低人参根细胞对Cu的吸收[46]；外源NO供体硝普钠(SNP)处理能够缓解铅(Pb)对拟南芥的毒害，但不能减少拟南芥对Pb的积累[66]。Xu等在研究中发现，对Cd的超富集植物龙葵而言，Cd胁迫能够诱导显著的生长抑制，促进H2O2的积累并破坏膜的完整性，而添加外源的NO供体亚硝基谷胱甘肽(GSNO)能够增强SOD和CAT的活性，增加Pro含量，抑制H2O2的积累，提高膜的完整性，从而缓解Cd对龙葵的毒害，并且添加NO清除剂c-PTIO后能够加重Cd对龙葵的毒害作用，这表明外源NO能够缓解Cd胁迫对龙葵造成的伤害，增强龙葵对Cd胁迫的抗性。但另一方面添加NO清除剂c-PTIO能够减少龙葵对Cd的吸收，添加外源的NO供体GSNO能够增加龙葵对Cd的吸收，说明NO促进龙葵根部对Cd的吸收[67]，这些研究暗示了外源NO可能存在相应的调节机制调节重金属在植物体内的分布。
面对重金属胁迫，植物细胞也有一系列的防御机制，以最大程度减少重金属可能造成的伤害，其中作为抗重金属胁迫的第一道屏障，细胞壁对吸收的重金属具有束缚作用[68]。研究表明进入水稻细胞的Al 80%—85%分布在细胞壁，从而有效地阻止Al进入水稻细胞的细胞质[69]，因此重金属在植物细胞壁的沉积是一种十分重要的重金属抗性机制。纤维素、半纤维素和果胶等是细胞壁的主要组成成分，研究发现外源NO能够调节植物细胞细胞壁成分的代谢，如低浓度的NO供体SNP能够促进番茄根部细胞壁纤维素的合成[70]，增加土豆嫩叶胼胝质的积累和沉积，而高浓度的NO却起相反的效果[71]；另外外源NO能够减少烟草BY-2悬浮细胞细胞壁果胶、半纤维素和纤维素的含量[72]，这些研究都暗示了外源NO可能通过调节植物细胞壁成分含量进而调节植物细胞对重金属胁迫的抗性。实际上，Xiong等证实了在Cd胁迫下，外源NO能够增加水稻根细胞细胞壁果胶和半纤维素的含量，增加Cd在根和茎细胞壁中的积累，减少Cd在叶片可溶性成分中的分布，从而增强水稻对Cd胁迫的抗性[73]；Zhang等也发现外源NO能够逆转Al胁迫诱导的水稻根细胞细胞壁果胶和半纤维素含量的增加，并且显著降低Al在水稻根尖和水稻幼苗细胞壁中的积累，从而减少Al胁迫诱导的根的生长抑制和膜脂过氧化，增强水稻对Al胁迫的抗性[74]；另外外源NO能够降低小麦和黑麦根尖细胞细胞壁对Al的吸附，增强Al胁迫抗性[75]。因此上述的外源NO缓解重金属胁迫，但并不减少植物对重金属的吸收可能是因为外源NO能够调节植物细胞细胞壁成分，促进了重金属在细胞壁的分布，减少了在细胞可溶性成分中的分布，但总体上并没有减少植物体内的重金属，但也可能是因为存在其他的调节机制。
4 内源NO参与调节植物重金属胁迫抗性尽管大量的研究表明低浓度的外源NO能够缓解重金属胁迫对植物造成的伤害，增强植物对重金属胁迫的抗性，然而内源NO在调节植物重金属胁迫抗性上的功能角色仍存在争议。有研究发现内源NO是有益的，能够缓解重金属胁迫诱导的毒性，如Tian等发现Al胁迫能够减少芙蓉葵体内的内源NO含量，并且抑制芙蓉葵根的伸长，添加NO的供体SNP能够缓解Al对根的伸长抑制，而NO清除剂c-PTIO、NOS抑制剂L-NAME以及NR抑制剂钨酸盐(Tungstate)却能够加重Al的抑制作用或者抑制外源NO的缓解作用，表明内源NO能够促进根的伸长，增强Al胁迫抗性[76]；Qiu等研究发现微波处理能够提高小麦抗氧化酶SOD、POD、CAT、APX、GPX和GR活性以及GSH、ASA和Car含量，缓解Cd胁迫对小麦的氧化伤害，而NO清除剂c-PTIO则能够逆转微波的缓解效果，表明内源NO能够增强小麦体内的抗氧化系统，参与微波增强植物对重金属胁迫的抗性反应[77]；Talukdar等发现内源NO与外源NO都能缓解As对菜豆造成的生长抑制和氧化胁迫，增强菜豆As胁迫抗性[78]；在荠菜中也有类似的发现，即外源NO与内源NO都能够缓解Cd诱导的膜质过氧化，增强荠菜对Cd胁迫的抗性[79]。
然而，近年来也有研究表明植物细胞内源NO是有害的，并参与重金属诱导的毒害反应和细胞凋亡过程。如100 μmol/L Cd能够显著抑制小麦和拟南芥根的生长，而添加NO清除剂c-PTIO都能够缓解这种抑制作用，表明内源NO参与Cd诱导的小麦和拟南芥根的生长抑制[49, 80]；100 μmol/L或者150 μmol/L的Cd能够诱导NO的大量产生，并导致拟南芥悬浮细胞凋亡，而添加NOS抑制剂L-NMMA以后，显著抑制其细胞凋亡[33]；研究还发现添加NO清除剂c-PTIO能够减少Cd诱导产生的O2·-和H2O2的积累，减少黄羽参豆根细胞对Cd的吸收，并显著抑制Cd诱导产生的细胞凋亡[81]；150 μmol/L Cd能够诱导烟草悬浮细胞产生大量的NO，并且诱导明显的细胞凋亡，而NOS抑制剂L-NAME和NO清除剂c-PTIO能够减少烟草细胞对Cd的吸收并且显著降低烟草悬浮细胞的细胞凋亡[35]，这些发现表明重金属胁迫下，植物体内源的NO是有害，并且参与重金属诱导的毒害反应和细胞凋亡。另外，30 μmol/L Cd能够促进拟南芥内源NO的大量释放并且促进Cd在拟南芥根部的大量积累，从而显著诱导拟南芥根的生长抑制，而添加NOS抑制剂L-NAME以后，拟南芥根部积累的Cd大量减少，并显著缓解了Cd胁迫诱导的根的生长抑制，表明Cd胁迫诱导的内源NO是有害的，促进拟南芥根部对Cd的吸收，进而促进Cd对拟南芥细胞造成的毒性[30]；caspase-3是一种半胱氨酸蛋白酶，是细胞凋亡过程中最主要的终末剪切酶，在细胞凋亡中起着不可替代的作用，研究发现100 μmol/L Cd诱导NO的大量合成，显著激活拟南芥caspase-3的活性，从而诱导拟南芥细胞凋亡，而添加NO清除剂c-PTIO能够显著抑制caspase-3的活性，减少其细胞凋亡，表明内源NO参与Cd诱导拟南芥的细胞凋亡过程[80]，以上研究进一步证明了内源NO是有害的，并参与重金属诱导的毒害反应和细胞凋亡过程。
植物螯合素(Phytochelatins,PCs)是一种由半胱氨酸、谷氨酸和甘氨酸组成的含巯基螯合多肽，GSH是植物螯合素的前体，在植物螯合素合成酶催化下合成植物螯合素，植物螯合素能够与进入细胞内的重金属离子螯合，并把重金属隔离在液泡内，从而减轻重金属对细胞质中活性物质的毒害，增强植物对重金属胁迫的抗性[59]。NO能够促进γ-ecs和gshs基因的表达，从而增加苜蓿根内GSH的含量[82]，而GSH是植物螯合素的前体，因此可以推断出NO也可能促进植物螯合素的合成，但事实并非如此，在100 μmol/L和150 μmol/L Cd胁迫下，拟南芥悬浮细胞内的植物螯合素含量大幅升高，而添加NOS抑制剂L-NAME后，植物螯合素含量进一步升高，表明内源NO抑制植物螯合素含量的升高，进一步研究发现是因为Cd诱导的内源NO能够通过s-亚硝基化作用与植物螯合素的半胱氨酸残基(Cys)结合形成NO-PC2、NO-PC3和NO-PC4，从而弱化植物螯合素对Cd的解毒作用，促进拟南芥悬浮细胞的细胞凋亡[33]，Elviri等也证实了NO与植物螯合素的s-亚硝基化结合[83]。由此可见，内源NO能够使植物螯合素s-亚硝基化，减弱植物螯合素对重金属胁迫的解毒功能，从而促进重金属对植物的毒害。
5 研究展望尽管国内外已对NO在调节植物重金属胁迫抗性方面做了大量研究，但是NO的具体作用机制仍然不是很清楚。建议未来相关研究应该加强以下几个方面的工作：
(1) 重视NO与其他信号分子如Ca2+、茉莉酸(JA)、水杨酸(SA)和乙烯(ET)等存在的交叉调控。研究表明其他的信号分子也参与调节植物重金属胁迫抗[84]，并且NO可能与其他信号分子共同作用来调节植物重金属胁迫抗性，因此加强NO与其他信号分子的交叉调控尤为必要。
(2) 加强对NO靶标分子的研究。NO作为一种信号分子，必然通过刺激靶标分子而发挥作用，而NO正是通过靶标分子进而调节植物对重金属胁迫的抗性，因此加强对NO靶标分子的研究很有意义。
(3) 加强对内源NO作用机制的探讨。重金属胁迫下，内源NO对植物重金属胁迫抗性起着更为重要的作用，并且研究发现内源NO对重金属胁迫具有双重作用，因此内源NO在重金属胁迫抗性上具体的功能角色有待研究。
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