生态学报  2014, Vol. 34 Issue (10): 2693-2701

文章信息

杨宁, 邹冬生, 杨满元, 林仲桂, 宋光桃, 陈志阳, 赵林峰
YANG Ning, ZOU Dongsheng, YANG Manyuan, LIN Zhonggui, SONG Guangtao, CHEN Zhiyang, ZHAO Linfeng
衡阳紫色土丘陵坡地植被恢复阶段土壤特性的演变
Changes of soil properties in re-vegetation stages on sloping-land with purple soils in hengyang of Hunan Province, South-central China
生态学报, 2014, 34(10): 2693-2701
Acta Ecologica Sinica, 2014, 34(10): 2693-2701
http://dx.doi.org/10.5846/stxb201301030012

文章历史

收稿日期:2013-01-03
网络出版日期:2014-02-20
衡阳紫色土丘陵坡地植被恢复阶段土壤特性的演变
杨宁1, 2, 邹冬生2, 杨满元1, 林仲桂1, 宋光桃1, 陈志阳1, 赵林峰1    
1. 湖南环境生物职业技术学院园林学院, 衡阳 421005;
2. 湖南农业大学 生物科学技术学院, 长沙 410128
摘要:采用空间代替时间序列方法,对衡阳紫色土丘陵坡地不同恢复阶段的土壤理化性质、土壤微生物数量、土壤微生物学性质和主要酶活性特征以及它们之间的相互关系进行研究。结果表明:不同恢复阶段土壤理化特征存在明显差异,从狗尾草群落阶段(Ⅰ)、紫薇-狗尾草群落阶段(Ⅱ)、牡荆+剌槐群落阶段(Ⅲ)到枫香+苦楝-牡荆群落阶段(Ⅳ),0-40cm土壤含水量、容重、非毛管孔隙度、孔隙比、大于0.25mm水稳性团聚体含量、有机碳(SOC)、全氮(TN)、碱解氮(AN)与速效磷(AP)显著增加,土壤容重显著减小,土壤pH值逐渐减小,土壤全磷(TP)、全钾(TK)与速效钾(AK)其差异变化不大,土壤理化特征的差异引起土壤微生物数量、微生物学性质与土壤酶活性的变化;不同恢复阶段土壤微生物总数显著增加,其中细菌数量显著增加,而真菌与放线菌数量显著减少;不同恢复阶段土壤基础呼吸(SBR)、土壤微生物量碳(SMBC)、土壤微生物量氮(SMBN)、土壤微生物量磷(SMBP)、土壤微生物熵(Cmic/Corg)显著增加,而代谢熵或呼吸熵(qCO2)显著减小,碳氮比(C/N)逐渐减小;不同恢复阶段均显著地增加了脲酶(URE)、蔗糖酶(INV)与磷酸酶(APE)的活性;土壤理化性状、土壤微生物数量、土壤微生物学性质与土壤酶活性之间存在密切的相关性。
关键词植被恢复    土壤微生物量    微生物种群数量    土壤酶活性    紫色土    衡阳    
Changes of soil properties in re-vegetation stages on sloping-land with purple soils in hengyang of Hunan Province, South-central China
YANG Ning1, 2, ZOU Dongsheng2, YANG Manyuan1, LIN Zhonggui1, SONG Guangtao1, CHEN Zhiyang1, ZHAO Linfeng1    
1. College of Landscape Architecture, Hunan Environmental-Biological Polytechnic College, Hengyang 421005, China;
2. College of Bioscience and Biotechnology, Hunan Agricultural University, Changsha 410128, China
Abstract:The purpose of the paper was to study the purple soil's physico-chemical characteristics, microbial populations, microbial properties, enzyme activities, and the relationships between them in different stages of re-vegetation on sloping-land in Hengyang of Hunan Province, South-central China. We took soils of 0-40cm depth in typical areas in Setaria viridi community stage (Ⅰ); Lagerstroemia indica-Setaria viridi community stage (Ⅱ); Vitex negundo var. cannabifolia+Robinia pseudoacacia community stage (Ⅲ); and Liquidamdar formosana+Melia azedarach-Vitex negundo var. cannabifolia community stage (Ⅳ) as our test objects by using the space series to replace time courses.The results showed that: (1) From Ⅰ, Ⅱ, Ⅲ to Ⅳ, the soil water content, total soil porosity, ratio of non-capillary porosity to capillary porosity, >0.25mm water stable aggregates content, SOC (Soil Organic C), TN (Total N), AN (Available N) and AP (Available P) increased significantly. In contrast, soil bulk density decreased significantly, pH decreased slightly, and there were no significant differences in TP (Total P), TK (Total K) and AK (Available K). The changes in the number of soil microbes, microbial properties and the soil enzyme activities have resulted from the differences in the soil physico-chemical characteristics. (2) The number of soil microbes increased significantly, with a significant increase in the number of bacteria, but the numbers of fungi and actiomycetes decreased significantly in the process of the succession. (3) The SBR (Soil Base Respiration), SMBC (Soil Microbial Biomass C), SMBN (Soil Microbial Biomass N), SMBP (Soil Microbial Biomass P) and Cmin/Corg increased significantly. The qCO2 decreased significantly, and C/N decreased, with no significant difference in the process of succession. The activities of URE (Urease), INV (Invertase) and APE (Alkaline phosphatase) significantly increased in the process of the succession. (4) There were close correlations among the soil physico-chemical characteristics, the number of soil microbes, the soil microbial properties and the soil enzyme activities. This study will, to some degree, enrich the restoration ecology of this area and provide a theoretical basis for the re-vegetation and reconstruction of ecosystems on sloping land with purple soils in Hengyang of Hunan Province, South-central China.
Key words: re-vegetation    soil microbial biomass    soil microbial populations    soil enzyme activities    purple soils    hengyang    

植被恢复是充分利用土壤-植物复合系统的功能改善局部环境,促进生物物种多样性形成的一种手段[ 1 ]。植被恢复的生态效应不但影响退化生态系统本身,也影响其相邻的系统,进而对区域与全球的生态平衡起到调节作用。土壤性质的改善以及土壤质量的改良是植被恢复的一个重要目标[ 2 ]。因此,关于植被与土壤环境之间关系的研究,一直是生态学的一个重要领域。

衡阳紫色土丘陵坡地面积1.625×105 hm2,是湖南省环境最为恶劣的地区之一,因紫色土有机质与氮的含量较低,渗透性较差,加上紫色土颜色深吸热性强,蒸发量大,以及区域性水、热分布等不利环境影响和不合理的开发,致使该区域不仅植被稀疏(有的区域出现大面积基岩裸露,几乎无土壤发育层,植被恢复极度困难),而且水土流失与季节性旱灾严重[ 3 ]。而植被恢复是治理该区域生态环境的关键措施[ 4 ]。长期以来,该区域实施的植被恢复与退耕还林还草政策取得了良好的生态效益,但以往对植被恢复的研究与评价多集中于减少径流与养分的流失[ 5 ],有关植被恢复对土壤生态系统,特别是土壤微生物、土壤酶活性影响的研究相对薄弱。大量的研究表明,土壤微生物是土壤生态系统的重要组成部分,参与土壤有机质分解、腐殖质形成、土壤养分转化和循环等过程[ 6 ]。土壤微生物量是衡量土壤质量、维持土壤肥力与植物生产力的一个重要指标[ 7,8 ];而土壤酶是土壤生物化学的一个重要指标,其活性高低可以反映土壤转化能力的强弱[ 9 ]。本研究以衡阳紫色土丘陵坡地植被恢复阶段为研究对象,采用“空间序列代替时间序列”的方法[ 1,10 ],从土壤理化性状、生物学性状等的角度进行对比分析,探讨它们之间的相互关系,旨在了解植被恢复过程中土壤特性的演变,为该区域的生态恢复与重建提供科学依据。

1 研究区概况

该区域位于湖南省中南部,湘江中游,地理坐标为110°32′16″—113°16′32″ E,26°07′05″—27°28′24″ N。属亚热带季风湿润气候,年平均气温18 ℃;极端最高气温40.5 ℃,极端最低气温-7.9 ℃,年平均降雨量1325 mm,年平均蒸发量1426.5 mm。平均相对湿度80%,全年无霜期286 d。地貌类型以丘岗为主。紫色土呈网状集中分布于该区域中部海拔60—200 m的地带,东起衡东县霞流、大浦,西至祁东县过水坪,北至衡阳县演陂、渣江,南达常宁市官岭、东山和耒阳市遥田、市炉一带,以衡南、衡阳两县面积最大。

2 研究方法 2.1 样地设置

2009年8月,选择坡度、坡向、坡位和裸岩率等生态因子基本一致的坡中下部沿等高线有代表性的、按照植被恢复阶段从低到高顺序的样地分别为(表 1):Ⅰ.狗尾草(Setaria viridi)群落阶段,Ⅱ.紫薇(Lagerstroemia indica)-狗尾草群落阶段,Ⅲ. 牡荆(Vitex negundo var. cannabifolia)+剌槐(Robinia pseudoacacia)群落阶段,Ⅳ.枫香(Liquidamdar formosana)+苦楝(Melia azedarach)-牡荆群落阶段,代表不同植被恢复阶段,且每个样地的面积>1 hm2,群落演替的初始条件均为退耕封育地,在耕作期间其种植的农作物均为玉米。在每个>1 hm2的样地内各设置3块400 m2(20 m×20 m)样方,且样方间距>20 m,在每个样方内按S型采取15个土样(0—40 cm)混合为一个混合样,去掉土壤中可见植物根系和残体,将混合土样分成2部分,一部分过筛(2 mm)放置于密封的大塑料桶内(25 ℃,10 d)供测定土壤微生物种群数量与微生物生物量,另一部分土壤风干后过筛,供测定土壤理化性质等。

表 1 样地概况 Table 1 The condition of sampling sites
恢复阶段Re-vegetation stage
演替年限Succession years/a25—820—2550a左右
坡度/坡向Slope/(°)/Aspect25/SW20/SW30/SW25/SW
海拔Altitude/m125115120130
盖度Coverage/%40506580
2.2 测定项目与方法 2.2.1 物理性状

土壤水分测定采用烘干法(105 ℃,12 h),容重、毛管孔隙度与非毛管孔隙度采用环刀法测定,土壤水稳团聚体的测定采用湿筛法。

2.2.2 化学指标

土壤有机碳(SOC)采用重铬酸钾氧化-外加热法、全氮(TN)采用半微量开氏法、碱解氮(AN)采用扩散吸收法、全磷(TP)采用NaOH熔融-钼锑抗显色-紫外分光光度法、速效磷(AP)采用NaHCO3提取-钼锑抗显色-紫外分光光度法,全钾(TK)采用NaOH熔融-原子吸收法,速效钾(AK)采用NH4Ac浸提-原子吸收法,pH值采用电极电位法测定[ 11 ]

2.2.3 土壤微生物学性质

土壤微生物量碳(SMBC)采用氯仿熏蒸-K2SO4浸提法测定,转换系数K采用0.45[ 12 ];土壤微生物量氮(SMBN)采用氯仿熏蒸-K2SO4提取-氮自动分析仪法,转换系数K采用0.45[ 13 ],土壤微生物量磷(SMBP)采用氯仿熏蒸-NaHCO4提取-Pi测定-外加Pi校正法,转换系数K采用0.4[ 14 ]。土壤基础呼吸(SBR)测试参照《土壤农业化学分析方法》,通常采用土壤中氧气的吸收量或二氧化碳和释放量来表达[ 15 ],代谢熵或呼吸熵(qCO2)是SBR与SMBC的比值,微生物熵(MQ)是SMBC与SOC的比值(Cmic/Corg)。

2.2.4 土壤微生物与酶活性

土壤微生物数量采用稀释平板法计数测定,其中细菌用牛肉膏蛋白胨培养培养基,真菌用马丁氏培养基,放线菌用改良高氏1号培养基[ 16 ];酶活性采用比色法测定,其中脲酶(URE)采用苯酚-次氯酸钠比色法,蔗糖酶(INV)采用3,5-二硝基水杨酸比色法,磷酸酶(APE)采用对硝基苯磷酸二钠比色法测定[ 17 ]

2.2.5 数据分析

采用SPSS 13.0软件进行数据处理与分析,采用单因素方差分析法(one-way ANOVA)和最小显著差异法(LSD)比较不同数据间的差异,用Pearson相关系数评价不同因子间的相关关系,所有数据均为3次重复的平均值,表中数据为平均数±标准差。

3 结果与分析 3.1 恢复阶段的土壤理化性状

表 2可见,随着恢复的演替进行,后2个恢复阶段的土壤含水量显著高于前2个恢复阶段的土壤含水量(P<0.05);可能受土壤颗粒组成差异的影响,前2个恢复阶段的土壤容重显著高于后2个恢复阶段的土壤容重(P<0.05);土壤总孔隙度逐渐增加(P>0.05),非毛管孔隙度增加显著(P<0.05),说明随着恢复的演替进行,土体构造变得疏松土壤容蓄能力升高;用来表征土壤通气性、渗透性与保水性的孔隙比(土壤非毛管孔隙度与毛管孔隙度的比值)显著增加(P<0.05);>0.25 mm水稳团聚体的含量在4个恢复阶段增加显著(P<0.05),其数量对土壤的通气、水分状况及抗蚀性乃至植物根系的生长有着重大的影响。

随着恢复演替进行,SOC、TN、AN、AP显著增加(P<0.05),由于SOC、TN、AN的增加,土壤中有机酸的相应增加,pH值逐渐减小(P>0.05),由于衡阳紫色土含有丰富的正长石等矿物,其风化后保留了相当数量的K,因此紫色土中的K的含量相对较高,TK的变化范围在1.98%—2.12%,AK的变化范围在260.87—268.12 mg/kg,其差异变化不大.

表 2 恢复阶段0—40 cm土壤的理化性状 Table 2 Soil layer (0—40cm) physico-chemical properties in re-vegetation stages
恢复阶段Re-vegetation stage
同行不同字母表示差异显著(P<0.05)
含水量Water content(g/kg)143.2±2.10b181.6±0.20b258.3±0.50a327.6±0.40a
容重Bulk density(g/cm3)1.421±0.121a1.399±0.100a1.116±0.102b1.113±0.112b
总孔隙度Total soil porosity/%41.226±3.431a42.013±4.872a42.564±1.894a43.784±2.936a
非毛管孔隙度Non-capillary porosity/%4.673±0.543a6.009±0.768ab7.021±0.665ab9.237±0.579b
毛管孔隙度Capillary porosity/%36.553±4.654a36.004±4.876a35.543±3.998a34.547±4.001a
孔隙比Ratio of non-capillary porosity to apillary porosity0.128±0.032a0.167±0.019ab0.198±0.015ab0.267±0.021b
>0.25 mm水稳团聚体含量 >0.25 mm water stable aggregates content/%34.327±2.985a47.871±4.875a66.123±6.546ab83.984±7.321b
有机碳Soil organic C(g/kg)0.105±0.012a0.215±0.022ab0.218±0.020ab0.333±0.032b
全氮Total N/%0.67±0.02b0.78±0.08b0.83±0.04b1.26±0.02a
全磷Total P/%0.09±0.01a0.08±0.00a0.07±0.00a0.08±0.02a
全钾Total K/%2.10±0.52a2.09±0.49a1.98±0.51a2.12±0.60a
碱解氮Available N(mg/kg)34.40±2.11b33.65±0.06b81.70±2.11a81.51±0.56a
速效磷Available P (mg/kg)8.34±0.63a7.66±1.29a11.48±1.15ab15.04±0.52b
速效钾Available K(mg/kg)268.12±6.45a256.87±5.98a266.45±6.87a260.87±5.34a
pH8.71±0.05a8.40±0.04a8.15±0.07a7.49±0.05a
3.2 恢复阶段土壤微生物数量

表 3可知,随着恢复的演替进行,土壤细菌数量显著增加(P<0.05);真菌数量、放线菌数量的变化规律与细菌数量的变化规律基本相反,真菌数量从大至少的排序为:紫薇-狗尾草群落阶段(Ⅱ)、狗尾草群落阶段(Ⅰ)、牡荆+剌槐群落阶段(Ⅲ)、枫香+苦楝-牡荆群落阶段(Ⅳ),差异达显著水平(P<0.05);放线菌的数量从多至少的排序为:狗尾草群落阶段(Ⅰ)、牡荆+剌槐群落阶段(Ⅲ)、紫薇-狗尾草群落阶段(Ⅱ)、枫香+苦楝-牡荆群落阶段(Ⅳ),差异也达显著水平(P<0.05)。

表 3 恢复阶段0—40 cm土壤微生物数量 Table 3 The number of soil microbes in re-vegetation stages
恢复阶段Re-vegetation stage
细菌数量Number of bacteria /(×106cfu/g)12.900±0.39a21.450±0.86b29.090±0.41ab94.090±1.45c
真菌数量Number of fungi /(×104cfu/g)5.872±0.041a7.433±0.035b3.484±0.098ab0.235±0.012c
放线菌数量Number of actiomycetes /(×105cfu/g)10.661±0.540a5.658±0.211b7.865±0.328ab0.145±0.075c
细菌比例Percentage of bacteria/%91.979±3.997a97.103±0.876ab97.258±0.889ab99.982±0.986b
真菌比例Percentage of fungi/%0.419±0.085a0.337±0.045ab0.117±0.000b0.003±0.000c
放线菌比例Percentage of actiomycetes/%7.601±0.067a2.561±0.014b2.630±0.021b0.015±0.000c

各恢复阶段土壤微生物数量组成不同,细菌数量占95%以上,据绝对优势,真菌的比例很小,不足1%。

表 4可知,土壤细菌数量与SOC、TN、AN呈极显著正相关(P<0.01),与AK呈显著正相关(P<0.05),真菌数量与SOC、TN呈显著正相关(P<0.05),其余的它们之间的相关性不明显。

表 4 土壤微生物数量与其它性质的相关分析 Table 4 Correlation analysis between the microbe quantity and other properties
项目 Item细菌数量 Number of bacteria真菌数量 Number of fungi放线菌数量 Number of actiomycetes
*P<0.05,**P<0.01
有机碳Soil organic C0.876**0.564*0.480
全氮Total N0.901**0.574*0.453
全磷Total P0.3850.2920.321
全钾Total K0.4670.3780.384
碱解氮Available N0.861**0.3940.412
速效磷Available P0.4320.4530.425
速效钾Available K0.587*0.4440.455
pH0.465-0.2910.304
3.3 土壤微生物学性质

表 5可以看出,随着恢复的演替进行,SBR显著增加(P<0.05),枫香+苦楝-牡荆群落阶段(Ⅳ)的SBR值高达(0.63±0.03)μg(CO2-C) g-1 h-1;SMBC、SMBN与SMBP均显著增加(P<0.05),增加幅度分别达133.31—433.20 mg/kg、9.11—25.94 mg/kg、5.11—13.11 mg/kg;MQ(Cmic/Corg)增加幅度为1.25—2.56,达显著水平(P<0.05);qCO2显著减小(P<0.05),减小幅度为0.76—1.39; C/N比逐渐减小(P>0.05)。

表 5 恢复阶段0—40cm土壤微生物学性质 Table 5 Soil microbial properties(0—40cm) in re-vegetation stages
恢复阶段Re-vegetation stage
土壤基础呼吸Soil base respiration/(μg(CO2-C) g-1 h-1)0.38±0.02a0.49±0.03ab0.53±0.02ab0.63±0.03b
土壤微生物量碳Soil microbial biomass C/(mg/kg)154.34±19.12a287.65±20.76ab321.78±19.65ab587.54±23.87b
土壤微生物量氮Soil microbial biomass N/(mg/kg)19.65±1.76a28.76±3.34ab32.17±3.87ab45.59±3.99b
土壤微生物量磷Soil microbial biomass P/(mg/kg)12.65±0.98a17.76±1.02ab18.00±1.01ab25.76±2.32b
微生物熵Microbial quotient/(Cmic/Corg)1.91±0.10a3.16±0.12ab3.52±0.11ab4.47±0.13b
呼吸熵Respiration quotient(qCO2)2.46±0.21a1.70±0.16ab1.65±0.15ab1.07±0.11b
碳氮比C/N12.05±0.98a11.68±1.32a11.02±1.50a10.44±1.62a

表 6可知,SBR、SMBC、SMBN、SMBP与SMBC、SMBN、SMBP、SOC、TN、AN、AP之间存在显著或极显著正相关关系(*P<0.05或**P<0.01),由于土壤pH值变化范围较小,在7.49—8.71之间,因此,各种酶的活性与pH值的相关性不大。

表 6 土壤微生物学性质与其它性质间的相关系数 Table 6 Correlation coefficient between microbial and other properties
项目 Item土壤微 生物量碳 SMBC土壤微 生物量氮 SMBN土壤微 生物量磷 SMBP土壤 有机碳 SOC全氮 TN碱解氮 AN速效磷 APpH
SBR,SMBC,SMBN,SMBP,SOC,TN,AN and AP in the table indicate soil base respiration,soil microbial biomass C,soil microbial biomass N,soil microbial biomass P,soil organic C,total N,available N and available P,respectively
土壤基础呼吸SBR0.888**0.876**0.859**0.799**0.854**0.812**0.615*-0.274
土壤微生物量碳SMBC0.875**0.850**0.865**0.897**0.884**0.686*-0.265
土壤微生物量氮SMBN0.679**0.800**0.913**0.823**0.556*-0.229
土壤微生物量磷SMBP0.699**0.614*0.556*0.898**-0.298
3.4 土壤酶活性

表 7可以看出,在4个恢复阶段中,INV的活性差异显著(P<0.05),牡荆+剌槐群落阶段(Ⅲ)的INV的活性高达(16.659±1.342)mg g-1 d-1,可能与该阶段植物多样性较高有关;URE与APE的活性均表现出相同的规律,即随恢复的演替进行而显著增强(P<0.05),其中,URE增加幅度在0.162—0.240 mg g-1 d-1,说明随着演替的进展进行,促进了土壤氮磷养分的转化,有利于植物的生长与土壤的改良,加速植被恢复的演替进程;在枫香+苦楝-牡荆群落阶段(Ⅳ),APE分别高达(876.903±64.459)μg g-1 d-1,可能与该阶段植物的种类及其凋落物的量有关。

表 7 恢复阶段土壤酶活性 Table 7 Soil enzyme activities in re-vegetation stages
恢复阶段Re-vegetation stage
脲酶Urease(mg g-1 d-1)0.172±0.021a0.234±0.019ab0.298±0.033ab0.412±0.021b
蔗糖酶Invertase(mg g-1 d-1)8.654±1.650a9.004±1.007a16.659±1.342b10.763±1.985a
磷酸酶Alkaline phosphatase(μg-1 g-1 d-1)154.985±24.098a453.675±38.009ab567.985±43.096ab876.903±64.459b

表 8可知,URE、INV、APE与INV、APE、SBR、SMBC、SMBN、SMBP、SOC、TN、AN、AP之间存在显著或极显著正相关关系(*P<0.05或**P<0.01),与pH值的相关性不明显。

表 8 土壤酶活性与其它性质间的相关系数 Table 8 Correlation coefficients between soil enzyme activities and other properties
项目 Item蔗糖酶 INV磷酸酶 APE土壤基 础呼吸 SBR土壤微生 物量碳 SMBC土壤微 生物量氮 SMBN土壤微 生物量磷 SMBP土壤 有机碳 SOC全氮 TN碱解氮 AN速效磷 APpH
URE,INV,APE,SBR,SMBC,SMBN,SMBP,SOC,TN,AN and AP in the table indicate urease,invertase,alkaline phosphatase,soil base respiration,soil microbial biomass C,soil microbial biomass N,soil microbial biomass P,soil organic C,total N,available N and available P,respectively
脲酶URE0.726**0.704**0.856**0.833**0.858**0.766**0.670**0.787**0.899**0.500*-0.029
蔗糖酶INV0.576*0.689*0.667**0.698**0.659**0.562*0.609*0.613*0.523*-0.030
磷酸酶APE0.700**0.681**0.734**0.752**0.667**0.658**0.666**0.887**-0.043
4 讨论 4.1 恢复对土壤理化特征的影响

SOC、N和P等是土壤主要的养分指标,而且SOC还是形成土壤结构的重要物质,直接影响土壤肥力、持水能力、抗蚀能力、土壤容重和pH等,有利于增强土壤孔隙度、通气性和结构性,有显著的缓冲作用和持水力,土壤养分含量尤其是SOC含有大量的植物营养元素,是土壤微生物的营养源和能源,能激发土壤微生物酶活性,有利于地下死根和凋落物的及时降解。衡阳紫色土丘陵坡地在恢复过程中,植物的生长增加了植被的盖度,减少了径流、泥沙和养分的流失,而根系分泌物与凋落物增加了SOC的输入[ 1 ],随着恢复年限的增长,土壤理化性状得到较大程度的改善(表 2)。这种变化趋势与Garcia等[ 18 ]与Gil-Sotress等[ 19 ]研究结果一致。

4.2 恢复对土壤微生物数量与组成的影响

细菌是土壤中的主要微生物类群,最大的数量达9.409×107 cfu/g,占95%以上,其次是放线菌,真菌数量最少(表 3),说明细菌分解土壤物质能力最强。由于细菌占微生物总数的绝大多数,微生物总数在各恢复阶段的变化规律取决于细菌数量,这与细菌、真菌与放线菌生态属性的差异有关,细菌个体小,繁殖方法简单,速度快,加之测试的土壤为根区,调查取样时间为8月份,水热条件适宜,有利于细菌的发育,而真菌和放线菌发育缓慢,当微生物繁殖与生长的环境得到改善时,真菌、放线菌与细菌竞争处于弱势地位,细菌数量增加从而抑制了真菌和放线菌的生长发育[ 1 ]。以往研究认为,细菌与放线菌适宜于中性或微碱性的土壤环境中生长,真菌在微碱性的环境中生长较差[ 20,21 ],而研究区域呈弱碱性,因此导致细菌比例与放线菌比例明显高于真菌所占的比例。有研究发现,细菌数量在某些土壤中较高,如祁连山山杨(Populus davidiana)灌木林土壤细菌的数量达4.27×109 cfu/g[ 22 ],四川洪雅县退耕还林模式下土壤细菌在秋季达到1.86×109 cfu/g[ 23 ]

4.3 恢复对土壤微生物学性质的影响

SMBC、SMBN与SBR反映微生物群落容量及活性,受植被凋落物、植物残体及根系分泌物的影响较大[ 24 ],也即对SOC较为敏感[ 25 ]表 6的相关系数亦有所表现,随着恢复的进行,SMBC、SMBN与SBR的值增加,这与蒋平安等[ 26 ]的研究结果一致,但是Aikio等[ 27 ]在芬兰冰川前沿的研究发现SMBC、SMBN在恢复初期呈下降趋势,并指出主要原因是砂质土壤养分的淋失和腐殖质层厚度的减少;土壤微生物熵MQ(Cmic/ Corg)是衡量一个生态系统SOC积累或损失的指标,该比值越高表示土壤C的积累越高,随着恢复的演替进行,由于SOC的增加,MQ显著增加; qCO2反映土壤微生物对基质的利用效率,该值低表示利用效率高,因此,随着恢复的演替进行,土壤环境对土壤微生物产生的生存压力减小,导致qCO2的减小,这与C/N比的研究结论一致。

C/N比是表征土壤微生物生长是否受到碳限制或氮限制的重要指标,影响到土壤微生物的群落结构。当土壤C/N≥30和C/N≤20时,土壤微生物生长分别受到氮源和碳源的限制,而C/N=25时对土壤微生物生长最有利,有利于土壤微生物在自然生态系统中的正常功能[ 28 ],在衡阳紫色土丘陵坡地的恢复过程中,C/N的值处于10.44—12.05之间(表 5),说明 C源供给数量是土壤微生物生长的主要限制因子。

4.4 恢复对土壤酶活性的影响

土壤酶活性的变化在一定的程度上反映了土壤与植被的演替规律,演替年限越长,土壤URE、INV、APE活性越高(表 7),这一结论与胡海波、邱莉萍等[ 29,30 ]等的研究结果一致。植被恢复对土壤酶活性的改善可能与以下几个因素有关:1)植被恢复后,SOC在土层积累,显著改善土壤理化性状,为酶类物质提供丰富的C源;2)植被恢复后在土层形成大量的植物根系,根系代谢释放大量的酶类,从而提高土层酶活性;3)植被恢复后,土壤含水量升高,土壤容重减小,土壤入渗性能和渗水性增强,有利于土壤物质随水分运动的迁移,从而促进了酶类物质的运动与活性,表 8的相关系数亦有所表现,因此,土壤酶活性也是土壤肥力的一个潜在性指标,可作为土壤质量评价的一个重要组成部分[ 31 ]。但也有相反的意见,如张猛、孙秀山[ 32,33 ]等认为因为土壤酶活性不能提供土壤生物状况的完整描述,且其测定时不能提供鉴定土壤总生物活性的恒值,不支持把土壤酶活性作为评价土壤肥力的参数。本研究的结论一部分与前人研究的结果一致,另一部分也不尽相同。造成这些差异的原因可能是研究的对象、研究对象所处的环境、以及研究对象土壤中各种成分的相互作用等不同,从而造成各种成分之间的耦合变化也不同。这些研究的不一致体现了土壤酶、养分与微生物之间关系的复杂性,也说明了它们之间的关系还需要进一步研究。

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